Taxonomia, distribuição geográfica e filogenia do gênero Codium

MARIA DE FÁTIMA DE OLIVEIRA-CARVALHO 

TAXONOMIA, DISTRIBUIÇÃO GEOGRÁFICA E 

FILOGENIA DO GÊNERO CODIUM STACKHOUSE 

(BRYOPSIDALES-CHLOROPHYTA) NO LITORAL 

BRASILEIRO. 

RECIFE 

2008

MARIA DE FÁTIMA DE OLIVEIRA-CARVALHO 

TAXONOMIA, DISTRIBUIÇÃO GEOGRÁFICA E 

FILOGENIA DO GÊNERO CODIUM STACKHOUSE 

(BRYOPSIDALES-CHLOROPHYTA) NO LITORAL 

RECIFE 

2008 

Tese apresentada ao Programa de Pós- 

Graduação em Botânica (PPGB) da 

Universidade Federal Rural de 

Pernambuco, como pré-requisito para 

obtenção ao título de Doutor em Botânica. 

C. decorticatum (Woodw.) M. Howe

Oliveira-Carvalho, M. F. Taxonomia, distribuição geográfica e filogenia ... iii 

UNIVERSIDADE FEDERAL RURAL DE PERNAMBUCO 

PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM BOTÂNICA – PPGB 

TAXONOMIA, DISTRIBUIÇÃO GEOGRÁFICA E FILOGENIA 

DO GÊNERO CODIUM STACKHOUSE (BRYOPSIDALES- 

CHLOROPHYTA) NO LITORAL BRASILEIRO. 

Orientadora: 

Dra. Sonia Maria Barreto Pereira 

Universidade Federal Rural de Pernambuco (UFRPE). 

Conselheiros: 

Dra. Mariana Cabral de Oliveira 

Universidade de São Paulo (USP). 

Dr. José Francisco Flores Pedroche. 

Universidad Autónoma Metropolitana, México. 

Recife 

2008

Ficha catalográfica 

C331t Oliveira-Carvalho, Maria de Fátima de 

Taxonomia, distribuição geográfica e filogenia do gênero 

Codium Stackhouse (Bryopsidales – Chlorophyta) no litoral 

brasileiro / Maria de Fátima de Oliveira-Carvalho. -- 2008. 

88 f. : il. 

Orientadora : Sonia Maria Barreto Pereira 

Tese (Doutorado em Botânica) - Universidade Federal 

Rural de Pernambuco. Departamento de Biologia. 

Inclui anexo e bibliografia. 

CDD 582 

1. Taxonomia 

2. Clorofíceas 

3. Codiaceae 

4. Morfologia 

5. Filogenia molecular 

6. rbcL 

7. Atlântico Americano 

8. Litoral brasileiro 

I. Pereira, Sonia Maria Barreto 

II. Título

Oliveira-Carvalho, M. F. Taxonomia, distribuição geográfica e filogenia ... iv 

TAXONOMIA, DISTRIBUIÇÃO GEOGRÁFICA E FILOGENIA DO 

GÊNERO CODIUM STACKHOUSE (BRYOPSIDALES- 

CHLOROPHYTA) NO LITORAL BRASILEIRO. 

Maria de Fátima de Oliveira-Carvalho 

Tese aprovada pela Banca examinadora: 

Orientadora: ___________________________________________ 

Dra. Sonia Maria Barreto Pereira - UFRPE 

Presidente 

Examinadores: __________________________________________ 

Dra. Ariadne do Nascimento Moura - UFRPE 

Titular 

Data da Aprovação: 20/02/2008 

__________________________________________ 

Dra. Enide Eskinazi-Leça – UFRPE 

Titular 

__________________________________________ 

Dra. Iva Carneiro Leão Barros – UFPE 

Titular 

__________________________________________ 

Dra. Lísia Mônica de Souza Gestinari - UFRJ 

Titular 

__________________________________________ 

Dra. Maria Elizabeth Bandeira-Pedrosa - UFRPE 

Titular 

Recife 

2008

Oliveira-Carvalho, M. F. Taxonomia, distribuição geográfica e filogenia ... v 

AGRADECIMENTOS 

A tese é uma obra que não se faz só, pois além da coragem e da persistência 

em querer concretizá‐la, é necessário que haja incentivo e contribuição de várias 

pessoas que acreditam no seu objetivo. As dificuldades e obstáculos enfrentados 

foram muitos e às vezes pareciam intransponíveis, mas durante esta minha 

caminhada, pude contar com ajuda direta e indireta de diversas pessoas e isto foi o 

suficiente para seguir em frente e não desistir jamais. A estas pessoas, gostaria de 

expressar os meus sinceros agradecimentos. 

Primeiro de tudo, agradeço a DEUS por permitir que eu suba mais um degrau 

na minha escalada acadêmica, sempre me guiando e me confortando nas horas mais 

difíceis. 

Ao maior presente que Deus me deu, o meu filho Robson Oliveira de Carvalho 

pela paciência e força, pois mesmo sofrendo a minha ausência por longos períodos 

afastados e dedicados ao desenvolvimento da tese em São Paulo, suportou com 

afinco a saudade materna. Te amo meu filho! 

Aos meus familiares pelo apoio, carinho e compreensão durante a realização 

deste trabalho. 

Ao Programa de Pós‐Graduação em Botânica (PPGB) da Universidade Federal 

Rural de Pernambuco (UFRPE) pela oportunidade na realização do Curso de 

Doutorado. 

À Universidade de São Paulo (USP) pelo apoio logístico e laboratorial para o 

desenvolvimento da parte de Biologia Molecular da minha Tese. 

À Dra. Sonia Maria Barreto Pereira, pelo aprendizado e amor às algas 

marinhas. E porque não pela amizade, confiança e respeito conquistado durante 

todos estes anos. 

À Dra. Mariana Cabral de Oliveira, na qualidade de Conselheira, pela 

paciência, competência e dom para transmitir seus conhecimentos. 

Ao Dr. José Francisco Flores Pedroche da Universidad Autónoma 

Metropolitana\UAM, México, na qualidade de conselheiro, pelo auxílio prestado

Oliveira-Carvalho, M. F. Taxonomia, distribuição geográfica e filogenia ... vi 

durante o desenvolvimento desta tese, principalmente pelos conselhos e sugestões 

durante a sua etapa final. 

A Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES), 

pela concessão da Bolsa de Doutorado. 

À Fundação de Amparo à Ciência e Tecnologia do Estado de Pernambuco 

(FACEPE), via “PRONEX”, e ao Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e 

Tecnológico (CNPq), via “Projeto Universal”, pelo suporte financeiro na coleta de 

Codium em alguns trechos do litoral brasileiro. 

A atual Coordenação do Programa de Pós‐Graduação em Botânica (PPGB), o 

Coordenador Dr. Ulysses Paulino Albuquerque e Vice‐Coordenadora, Dra. Cibele 

Cardoso de Castro, pelo respeito e incentivo aos alunos deste Programa. 

Às ex‐Coordenadoras do PPGB, Dra. Ariadne do Nascimento Moura e Dra. 

Carmen Silvia Zickel pelo apoio dado durante a realização deste trabalho, no período 

em que estiveram a frente da Coordenação deste Programa e também pela amizade. 

Aos professores que fazem parte do Programa de Pós‐Graduação em Botânica 

(PPGB) pelos incentivos e ensinamentos durante o período de estudo. 

À Dra. Enide Eskinazi‐Leça pelo simples fato de existir, digna de todo meu 

respeito e admiração. 

À Dra. Maria Elizabeth Bandeira Pedrosa pelo convívio e amizade. 

À Dra. Mutuê Toyota Fujii, pela simpatia e concessão na utilização do 

microscópio acoplado a máquina fotográfica digital para a obtenção das fotografias 

das estruturas anatômicas de Codium. 

À Dra. Nair Yocoya pelo carinho e palavras amigas durantes as minhas visitas 

ao Instituto de Botânica e pela agradável companhia nos horários do almoço. 

Às Professoras Dra. Estela Maria Plastino e a Dra. Fanly Fungyi Chow Ho, 

pelas palavras amigas e convívio nos horários do almoço no Laboratório de Pós‐ 

Graduação da USP. 

Aos colegas ficólogos que colaboraram na coleta e\ou envio de material 

botânico, bem como, aos que auxiliaram na consulta das exsicatas de Codium nos 

herbários brasileiros: Bióloga Aigara Miranda Alves (UEFS‐BA), Dr. Carlos Wallace

Oliveira-Carvalho, M. F. Taxonomia, distribuição geográfica e filogenia ... vii 

do Nascimento Moura (UEFS ‐ BA), MSc. Diógina Barata (IB‐SP), Dr. Eurico Cabral 

de Oliveira (USP ‐ SP), Dr. Flavio Augusto de Souza Berchez (USP ‐ SP), Dr. Gilberto 

Menezes Amado Filho (J. Botânico do Rio de Janeiro ‐ RJ), Dra. Lísia Mônica de 

Souza Gestinari (UFRJ‐RJ), Dra. Maria Teresa Menezes de Széchy (UFRJ‐RJ), Dra. 

Mariângela Menezes (Museu Nacional – UFRJ). Bióloga Mariana Rodrigues Pacheco 

(IB‐SP), Dr. Miguel da Costa Accioly (UFBA ‐BA), Dr. Paulo Antunes Horta Junior 

(UFSC‐SC), Dra. Silvia Maria Pita de Beauclair Guimarães (IBT‐SP), MSc. Valéria 

Cassano (UERJ‐RJ), Dra. Valéria Flora Hadel (CEBIMar – USP) e Dra. Zenilda L. 

Bouzon (UFSC‐SC). 

À minha pequena turma de doutorado: Ise de Goreth Silva e Elizamar Ciriaco 

da Silva, pela amizade e respeito mútuo. 

Ao Biólogo e técnico Rosário Petti do Laboratório de Algas Marinhas do IB‐ 

USP, pelo apoio e assessoria sempre presente. 

À técnica Silvia Regina Blanco do Laboratório de Biologia Molecular de 

Plantas da USP, pela ajuda na realização das reações de sequenciamento. 

À técnica Gisele Rodrigues de Oliveira Costa do Laboratório de Anatomia 

Vegetal da USP, pelo acesso e utilização da sala de fotografia microscópica. 

À Antônia Creusa da Silva e Silvana Alves Scarance, proprietárias do 

pensionato pelo bom convívio e amizade conquistada. 

Ao Dr. Antônio Travassos Junior pela tradução dos Abstracts. 

Aos amigos do LABOFIC (PPGB), Paula Regina Fortunato do Nascimento, 

Douglas Correia Burgos, Suellen Barros Brayner, Talita Oliveira Junior, Leonardo R. 

Chaves Coelho, José Juarez Ferreira Monteiro, Roberta Sampaio Pinho, Silvana 

Nascimento Dias, pela força, amizade e agradáveis momentos de descontração e altas 

gargalhadas nos horários do almoço. 

Aos amigos que já fizeram parte do LABOFIC (PPGB): Nádja Maia Batista de 

Oliveira, Gisele Maria Pereira Dias, Maria das Dores dos Santos, Danielle Gomes 

Pereira de Lima, Khey Albert de Azevedo Fontes e Fernanda Alves Ribeiro. 

Aos novos amigos do Laboratório LAM (USP): Dra. Daniele Milstein, Dra. 

Leila Hayashi, Dra. Luciana Bastos Ferreira, Dr. Carlos Eduardo Amâncio, Dra.

Oliveira-Carvalho, M. F. Taxonomia, distribuição geográfica e filogenia ... viii 

Nathalia Pirani Ghilard e aos Biólogos: Amanda Vanderley, Guilherme Filho, Beatriz 

Nogueira Torrano da Silva, José Bonomi Barufi, Mariane Martins Mosca, Lígia M. T. 

Ayres da Silva, Ignácio Falomir, Monica Miyuki Takahashi e Daniela Miwa Kikuchi. 

Aos funcionários da secretaria do Programa de Pós‐Graduação Margarida 

Clara e Manasses Araújo pela atenção presteza e respeito que sempre dispensaram 

aos alunos deste programa. 

À minha secretária do lar, Maria Helena de Araújo, por ter segurado a barra 

durante os meses que fiquei em São Paulo, sempre confortando e ajudando o meu 

filho a suportar a saudade materna. 

Enfim, a todos aqueles que de uma forma ou de outra contribuíram e me 

apoiaram para a realização deste trabalho.

SUMÁRIO 

Resumo ............................................................................................................. 2 

Abstract ............................................................................................................. 4 

1. Introdução ..................................................................................................... 6 

2. Revisão de literatura ..................................................................................... 11 

3. Referências ................................................................................................... 18 

4. Resultados .................................................................................................... 31 

4.1 - Manuscrito a ser enviado para a Revista Nova Hedwigia ................... 31 

Artigo l: O gênero Codium Stackhouse (Bryopsidales – Chlorophyta) no 

Brasil: taxonomia e distribuição..................................................................... 

Resumo ............................................................................................................. 33 

Abstract ............................................................................................................. 33 

Introdução ......................................................................................................... 34 

Material e Métodos ............................................................................................ 35 

Resultados e discussão .................................................................................... 36 

Agradecimentos ................................................................................................ 51 

Referências ....................................................................................................... 51 

Anexos do Manuscrito I 

4.2 - Manuscrito a ser enviado para a Revista Journal of Phycology......... 56 

Artigo ll: Análises filogenéticas das espécies brasileiras do gênero Codium 

(Bryopsidales-Chlorophyta) baseada na seqüência do éxon 1 do gene 

rbcL.................................................................................................................... 

Resumo ............................................................................................................. 58 

Abstract ............................................................................................................. 59 

Introdução ......................................................................................................... 60 

Material e Métodos ............................................................................................ 63 

Resultados ........................................................................................................ 68 

Discussão .......................................................................................................... 73 

Agradecimentos ................................................................................................ 78 

Referências ....................................................................................................... 78 

Anexos do manuscrito ll 

Anexos gerais 

5. Considerações Finais .................................................................................... 85 

32 

57

Oliveira-Carvalho, M. F. Taxonomia, distribuição geográfica e filogenia ... 2 

RESUMO 

Codium Stackhouse é um gênero exclusivamente marinho, engloba 125 táxons e 

encontra-se distribuído nos mares de quase todo o mundo, com exceção para as 

regiões polares. A maior diversidade infragenérica encontra-se nos mares da zona 

temperada e subtropical. No Brasil, são poucas as informações sobre o gênero, 

sendo que a maioria dos estudos refere-se a levantamentos florísticos de diversas 

localidades, se restringindo a um pequeno número de publicações. O objetivo deste 

trabalho é apresentar o levantamento do referido gênero no litoral brasileiro com 

ênfase na taxonomia e distribuição de seus representantes. Os estudos morfoanatômicos 

foram baseados em material coletado em diversos estados brasileiros 

(PB, PE, BA, ES, RJ, SP, SC e RS), na região entre-marés, durante as baixas 

marés, com auxílio de espátulas, e quando necessário, através de mergulhos livres 

nas poças recifais. Os exemplares foram conservados em solução de formaldeído a 

4%. Para uma melhor compreensão das variações fenotípicas e visando contemplar 

um maior número possível de amostras nos estados brasileiros, foi consultado o 

material de Codium depositado nos seguintes herbários nacionais indexados: JPB, 

PEUFR, ALCB, HUEFS, RB, R, HB, RFA, SP, SPF e FLOR. Também foram 

analisadas as exsicatas dos exemplares coletados pelas expedições oceanográficas 

Almirante Saldanha, Akaroa, Canopus e Comissão Recife. Além disso, foram 

analisadas as exsicatas de Codium procedentes do Brasil depositadas no Herbário 

da Universidade da Califórnia, Berkeley (UC). Todas as exsicatas foram 

cuidadosamente analisadas, se procedendo à confirmação e/ou correção das 

identificações. A identificação dos táxons foi baseada em caracteres morfológicos 

(hábito, padrão de ramificação e dimensões dos ramos), anatômicos (diâmetro dos 

filamentos medulares, morfologia e dimensões dos utrículos e disposição de pêlos 

ou cicatrizes) e reprodutivos (morfologia, dimensões e inserção dos gametângios). 

Na costa brasileira, foi registrada a ocorrência de sete táxons infragenéricos, 

distribuídos nas seguintes seções: Adhaerentia (C. intertextum), Spongiosa (C. 

spongiosum), Tomentosa (C. isthmocladum, C. repens e Codium sp.) e Elongata (C. 

decorticatum e C. taylorii). C. tomentosum está sendo considerada como espécie 

duvidosa para o litoral brasileiro e C. profundum como “nome nudum” e, por isto, 

citada como Codium sp. Devido à marcada plasticidade morfológica, as espécies C. 

decorticatum, C. isthmocladum e C. taylorii foram as que apresentaram maiores 

dificuldades na identificação taxonômica. Três espécies de hábito ereto como C. 

isthmocladum, C. decorticatum e C. taylorii e a de hábito prostrado C. intertextum


foram as que apresentaram maior distribuição na costa brasileira. Algumas espécies 

tiveram sua distribuição geográfica ampliada para a costa brasileira, como C. 

decorticatum (Ceará, Paraíba e Alagoas); C. intertextum (Alagoas), C. isthmocladum 

(Alagoas, Sergipe e Paraná) e C. taylorii (Ceará, Paraíba, Alagoas e Paraná). Além 

da taxonomia baseada em caracteres morfológicos e reprodutivos foi feito o 

sequenciamento de DNA visando entender melhor o polimorfismo encontrado em 

algumas espécies. No momento, o sequenciamento de DNA é a técnica mais 

poderosa para detectar polimorfismo no genótipo e tem sido bastante utilizada na 

comparação de diferentes níveis taxonômicos. Seqüências do primeiro éxon da 

grande subunidade RUBISCO (rbcL) têm sido usadas na delimitação molecular e 

filogenia de espécies. Para o presente estudo, foram obtidas amostras de Codium 

em diversas localidades do Brasil (PB, PE, BA, RJ, SP e SC), além do Arquipélago 

de Fernando de Noronha. As amostras foram preservadas em álcool a 70% e sílica 

gel. O processo de extração, amplificação, sequenciamento e análise dos dados 

foram realizados na Universidade de São Paulo (USP) no laboratório de Algas 

Marinhas Edson J. de Paula (LAM). Neste estudo, as seqüências para o éxon 1 do 

gene rbcL foram obtidas de 24 amostras de seis espécies ocorrentes na costa 

brasileira: C. decorticatum, C. intertextum, C. isthmocladum, C. spongiosum, C. 

taylorii e C. repens. O éxon 1 do rbcL apresentou 788 pares de base para todas as 

amostras. Das 24 amostras seqüenciadas, dez seqüências únicas foram obtidas, as 

quais foram filogeneticamente analisadas com outras seqüências do GenBank, 

usando diferentes métodos de inferências. As árvores resultantes foram similares, 

apresentando três principais agrupamentos monofiléticos. O agrupamento a, 

composto por espécies de hábito prostrado, não ramificado e na maioria com 

utrículos agrupados e pequenos; o agrupamento b, consistindo na sua maioria, 

espécies de hábito ereto, ramo cilíndrico, com utrículos grandes individuais e 

finalmente o agrupamento c composto por espécies de hábito ereto, ramo cilíndrico a 

levemente achatado, utrículos individuais, com tamanhos intermediários. As 

espécies brasileiras agruparam com similares de outras localidades geográficas e 

aparecem entre os principais agrupamentos monofiléticos. Estes resultados indicam 

que a colonização do Atlântico sul americano ocorreu muitas vezes, possivelmente 

de espécies provenientes do Indo-Pacífico.


ABSTRACT 

Codium Stackhouse is a genus exclusively marine which is represented by 125 taxa 

and it is distributed in the seas of almost the whole world, except for the polar 

regions. The highest infrageneric diversity is found in the temperate and subtropical 

zone seas. In Brazil, there are few informations about the genus, and the majority of 

the studies deals with floristic surveys from many localities, with just few publications. 

The aim of this work is to present the survey of this genus with emphasis to its 

taxonomy and the distribution of its representatives. The morphological studies were 

based in material collected from many Brazilian states (PB, PE, BA, ES, RJ, SP, SC 

and RS), in the intertidal region, during the low tides, with the help of spatulas and 

when necessary through diving in the reef ponds. The specimens were preserved 

with formalin (4%). For a better comprehension of the phenotypical variations and 

aiming to contemplate a number of samples as high as possible in the Brazilian 

states, the material of Codium was studied in the following indexed national herbaria: 

JPB, PEUFR, ALCB, HUEFS, RB, R, HB, RFA, SP, SPF and FLOR. They were also 

analyzed the exsiccates of the specimens collected by the Almirante Saldanha, 

Canopus and Recife Commission oceanographic expeditions. Besides, were 

analyzed as exsiccates of Codium from Brazil deposited in the Herbarium of the 

University of California, Berkeley (UC). All the exsiccates were carefully analyzed and 

confirmed and/or corrected as for the identifications. The identification of the taxa 

was based in morphological characters (habit, ramification pattern and the 

dimensions of the stalks), anatomical (diameter of the medular filaments, morphology 

and dimensions of the utricula and disposition of the hairs or scars) and reproductive 

(morphology, dimentions and insertions of the gametangia). In the Brazilian coast, it 

was registered the occurrence of seven infrageneric taxa, distributed in the following 

sections: Adhaerentia (C. Intertextum), Spongiosa (C. spongiosum), Tomentosa (C. 

isthmocladum, C. repens and Codium sp.) and Elongata (C. decorticatum and C. 

taylorii). From this work, C. tomentosum is considered as a doubtful species to the 

Brazilian littoral and C. profundum as “nome nudum” and because of this, cited as 

Codium sp. As for the great morphological plasticity the species C. decorticatum, C. 

isthmocladum and C. taylorii were those which showed the greatest difficulties in the 

taxonomical identification. Three species of straight habit as C. isthmocladum, C. 

decorticatum and C. taylorii and prostrate habit C. intertextum were those which 

presented the highest distribution in the Brazilian coast. Through the present study,


some species had their geographical distribution increased to the Brazilian coast, as 

C. decorticatum (Ceará, Paraíba and Alagoas); C. intertextum (Alagoas), C. 

isthmocladum (Alagoas, Sergipe and Paraná) and C. taylorii (Ceará, Paraíba, 

Alagoas and Paraná). Besides the taxonomy based in morphological and 

reproductive characters the DNA sequencing was performed aiming the 

comprehension of the polymorphism found in some species. In the moment, the DNA 

sequencing is the most powerful technique to detecting the polymorphism in the 

genotype and it has been very used in comparing the different taxonomical levels. 

Sequences of the first exon of the large subunity RUBISCO (rbcL) has been used in 

the molecular delimitation and phylogeny of the species. To the present study, 

samplings were obtained from Codium in many localities of Brazil (PB, PE, BA, RJ, 

SP and SC), besides Fernando de Noronha Islands. The extraction process, 

amplification, sequencing and analysis of data were performed in the University of 

São Paulo (USP) in the laboratory of Marine Algae Edson J. de Paula (LAM). In this 

study, the sequences for the exon 1 of the gene rbcL were obtained from 24 

samplings of six species found in the Brazilian coast: C. decorticatum, C. intertextum, 

C. isthmocladum, C. spongiosum, C. taylorii and C. repens. The exon 1 of the rbcL 

showed 788 pairs of the base for all samplings. From the 24 sequenced samplings, 

ten unique sequences were obtained, which were phylogenetically analyzed with 

other sequences from GenBank, using different methods of inferences. The resulting 

trees were similar and they showed three principal monophyletic groupings. The 

grouping A, composed by non-ramificated prostrated habit species and in the 

majority with grouped and small utricules; the grouping B, consisting in the great 

majority, species with erect habit, cylindrical stalk, with individual utricules with 

intermidiary sizes. The Brazilian species group with similar from other geographical 

localities and they are between the main monophyletic groupings. These results 

indicate that the colonization of the South American Atlantic occurred many times 

possibly of species which came from Indo-Pacific.


1 – INTRODUÇÃO 

As algas verdes estão inseridas no phylum Chlorophyta constituindo o maior e 

mais diversificado grupo de algas, tanto em nível de espécie, como também de 

padrões morfológicos, estruturais e reprodutivos (Oliveira 2003). Atualmente, o 

phylum encontra-se representado por 17.000 espécies (Raven et al. 2001, Reviers 

2006). 

A morfologia das algas verdes é bastante simples, ocorrendo numerosos grupos 

unicelulares (livres ou coloniais) até pluricelulares como as filamentosas, com ou 

sem ramificação, e parenquimatosas simples. Além disso, merecem destaque as 

espécies com talo cenocítico, que se desenvolvem como resultado de repetidas 

divisões nucleares sem a formação de novas paredes celulares. Dentre as 

cenocíticas, citam-se exemplos de alguns gêneros, tais como Codium Stackhouse, 

Halimeda J. V. Lamouroux, Penicillus Lamarck, Udotea J. V. Lamouroux, entre 

outros membros da ordem Bryopsidales (Pereira 1996, Raven et al. 2001, Oliveira 

2003). Estes organismos constituem importantes componentes nas comunidades 

bênticas de águas rasas de vários ambientes marinhos tropicais e subtropicais 

(DeWreede 2006). 

O gênero Codium é exclusivamente marinho, constituído por 125 espécies 

(Pedroche 2001), e se distribuem em todos os mares, com exceção para os 

ambientes marinhos das regiões polares (Pedroche et al. 2002). Popularmente, seus 

representantes são denominados como “espaguete do mar” (spaghetti grass), 

“dedos de homens mortos” (dead man’s fingers), “erva daninha japonesa” (japanese 

weed) e “ladrão de ostras” (oyster thief) (Ranus 1971, Loosanoff 1975, Trowbridge 

1998). 

O gênero caracteriza-se por apresentar talo multiaxial, de consistência esponjosa 

(Graham & Wilcox 2000), em que os filamentos cenocíticos se entrelaçam formando 

um corpo vegetal macroscópico, de forma definida (Pedroche 1981). Seus 

representantes possuem hábito ereto ou prostrado, com marcada diversidade 

morfológica, podendo apresentar talo aplanado, pulvinado, digitiforme, globular, 

petalóide, membraniforme e cilíndrico. Além disso, os ramos podem ser livres ou 

anastomosados (Silva 1952, Pedroche 2001). 

A região medular é densamente entrelaçada por filamentos cilíndricos, que se 

alargam na extremidade originando os utrículos, caracterizando a camada cortical 

(Figura 1). Os utrículos estão dispostos radialmente, portando longos pêlos hialinos


e caducos (Van den Hoek et al. 1995, Graham & Wilcox 2000, Pedroche 2001). A 

parede celular é constituída principalmente por monossacarídeo (β-1,4 D-manose) 

ou pelo polissacarídeo arabinogalactana sulfatada e não por celulose (Van den Hoek 

et al. 1995, Graham & Wilcox 2000). O gênero é homoplastídico (Van den Hoek et al. 

1995, Bold & Wynne 1985) com numerosos cloroplastos discóides sem pirenóides, 

situados nos utrículos (Graham & Wilcox 2000). 

2 cm 

Talo adulto 

Região medular 

Corte transversal do talo 

Região cortical 

gametângio 

500μm 

Utrículo 

Filamento medular 

Figura 1 - Desenho esquemático de um representante do gênero Codium 

Stackhouse (corte transversal do talo, adaptado de Lee 1989). 

Com relação ao ciclo de vida, são organismos haplobiontes diplontes (Van den 

Hoek et al. 1995). A reprodução pode ser por via sexual (através da fusão de 

gametas), bem como assexual com a produção de “Brutkorper” (gametângios 

abortivos modificados) e fragmentação do talo. No entanto, estas modalidades de 

reprodução variam entre espécies e populações geográficas (Chang et al. 2003). 

Na reprodução sexual, o gametângio é formado lateralmente no utrículo sobre 

um curto pedicelo e seu conteúdo interno se transforma por meiose em gametas 

biflagelados (Pedroche 2001). Apresenta marcada anisogamia, onde os gametas 

masculinos são pequenos e apresentam poucos cloroplastos, enquanto que os 

gametas femininos são consideravelmente maiores, com vários cloroplastos (Prince 

& Trowbridge 2004). Quando os gametas atingem a maturidade, há uma força 

interna explosiva que rompe o poro terminal do gametângio e estes são expulsos 

através de um duto em meio a uma massa gelatinosa (Williams 1980, Lee 1989).


Após a liberação e fecundação dos gametas biflagelados, o zigoto se desenvolve em 

uma vesícula prostrada e amorfa, que posteriormente se alonga, formando os 

primeiros utrículos, para finalmente consolidar o talo multiaxial (Park & Sohn 1992). 

Os representantes do referido gênero habitam os ambientes marinhos, ocorrendo 

desde a franja do mesolitoral até regiões mais profundas (200 m), fixando-se a 

vários tipos de substratos, como rochas, raízes de mangue, conchas velhas e vivas 

de moluscos como ostras e mexilhões, cascos de barcos, entre outros (Pedroche et 

al. 2002). 

Quanto a importancia econômica, algumas espécies são utilizadas como fonte de 

alimento para moluscos cultivados na Califórnia (USA), como também por seres 

humanos. Além disso, fornecem compostos bioativos com potencial anticancerígeno 

e antibiótico (Verbruggen et al. 2007). 

No gênero, alguns representantes são considerados verdadeiras pragas em 

vários habitats marinhos da região temperada, devido ao grande potencial invasor, 

dada a sua rápida propagação e crescimento (Ranus 1971, Bégin & Scheibling 

2003, Chavanich et al. 2006). Cita-se como exemplo, C. fragile (Suringar) Hariot 

subsp. tomentosoides (van Goor) Silva, nativa do Japão, sendo considerada a mais 

invasiva do mundo, tendo sido introduzida na Europa, costa leste e oeste da 

América do Norte, Austrália, Nova Zelândia e África do Sul (Trowbridge 1998, Prince 

& Trowbridge 2004). Também têm gerado grandes impactos econômicos sobre as 

indústrias de moluscos e ostras em Massachussets (USA). Este efeito nocivo se dá 

quando o peso da alga ultrapassa o peso do hospedeiro (molusco ou ostra), ambos 

boiarão e serão transportados pelas correntes e marés (Ranus 1971). 

A maioria dos representantes de Codium encontra-se distribuído na zona 

temperada e subtropical como o Japão (19 espécies), África do Sul (19 espécies), 

Austrália (18 espécies) e México na costa do Pacífico (13 espécies) (Goff et al. 1992, 

Pedroche 2001, Pedroche et al. 2002). Na flora tropical e subtropical do Atlântico 

Ocidental, está representado por 11 táxons infragenéricos (Wynne 2005). No Brasil 

estão registradas as seguintes espécies: C. decorticatum (Woodw.) M. Howe, C. 

intertextum Collins & Herv., C. isthmocladum Vickers, C. profundum Silva & 

Chacana, C. repens P. Crouan ex Vickers, C. spongiosum Harv., C. taylorii P. C. 

Silva e C. tomentosum Stackhouse (Oliveira Filho 1977, Pereira et al. 2002, Chacana 

et al. 2003, Yoneshigue-Valentin et al. 2006, Pereira et al. 2007). 

Os estudos taxonômicos do gênero Codium estão baseados na morfologia 

externa (hábito, sistema basal e ramificação); na morfologia interna (filamentos


medulares e utrículos) como nos reprodutivos representados pelos gametângios. 

Para alguns autores estas análises não têm apresentado resultados satisfatórios, 

tendo em vista que, apenas 40% das espécies estão bem definidas quanto a sua 

posição taxonômica, sendo que o restante forma grupos complexos de intricada 

variação morfológica (Silva 1998, Pedroche et al. 2002). 

O talo apresenta marcada plasticidade, observada por diversos autores, os 

quais têm relacionado esta característica ao elevado grau de variabilidade 

morfológica dentre e entre populações (Silva 1951, Chacana et al. 1996, Pedroche 

et al. 2002). Em conseqüência disto, a taxonomia de Codium tem se tornado 

bastante complexa e confusa (Chacana et al. 1996). 

Pereira (1996), numa abordagem crítica sobre os estudos ficológicos realizados 

no nordeste brasileiro, enfatizou a necessidade de estudos taxonômicos mais 

acurados em gêneros com grande plasticidade morfológica, citando o gênero 

Codium como um dos exemplos entre as algas verdes. 

No Brasil há poucas informações sobre a taxonomia deste gênero e encontrase 

contida em publicações que tratam de levantamentos florísticos gerais ao longo 

do litoral brasileiro. Até o presente momento, apenas o trabalho de Alves & Moura 

(2005) trata exclusivamente a sistemática do gênero. A referida pesquisa foi 

realizada na Ilha de Itaparica (BA), onde cinco espécies foram registradas: C. 

intertextum, C. isthmocladum, C. taylorii, C. decorticatum e C. repens. 

Na tentativa de esclarecer melhor a sistemática do gênero, há uma tendência de 

aliar os estudos taxonômicos a novas ferramentas como, por exemplo, o uso de 

marcadores moleculares, que poderão auxiliar com maior precisão as possíveis 

variações fenotípicas, frequentemente relacionadas às variações ambientais. Mesmo 

assim, verifica-se um número bastante reduzido de trabalhos que utilizam 

marcadores moleculares para este grupo. No Brasil, até a presente data, nenhum 

trabalho utilizando marcadores moleculares foi realizado com os representantes de 

Codium. 

Devido ao pouco conhecimento do gênero no Brasil, este trabalho teve como 

objetivo principal identificar, descrever e ilustrar as espécies de Codium no litoral 

brasileiro, assim como, fornecer dados sobre sua distribuição. Por se tratar de um 

grupo polimórfico, utilizou-se como ferramenta auxiliar a biologia molecular. Para 

atingir os objetivos acima e visando compreender as variações fenotípicas e as 

relações filogenéticas entre as populações brasileiras, foi formulada a hipótese de 

que a dificuldade taxonômica do gênero está relacionada ao elevado grau de


polimorfismo, dependente das variações ambientais, e que estudos morfológicos 

complementados por estudos bio-moleculares poderiam fornecer subsídios para a 

delimitação segura das espécies.


2 - REVISÃO DE LITERATURA 

2.1 – MUNDIAL 

O gênero Codium foi estabelecido em 1797 por John Stackhouse, em sua 

obra intitulada Nereis Britannica, tendo como espécie tipo Codium tomentosum 

Stackhouse proveniente da Inglaterra (Guiry & Guiry 2007). O nome genérico 

Codium é derivado do grego “Kodion” que significa “pele de carneiro” referindo-se a 

textura de lã da planta adulta (Ranus 1971). 

Setchell (1937), analisando os representantes de Codium do Arquipélago da Ilha 

Juan Fernandez (Chile), com base na morfologia e anatomia, dividiu o gênero em 

dois subgêneros: Tylecodium Setchell e Shizocodium Setchell. O subgênero 

Tylecodium abrange as formas prostradas, com ausência de ramificações 

verdadeiras e utrículos muito ramificados, enquanto que o subgênero Shizocodium 

engloba as formas eretas basicamente cilíndricas, com ramificações dicotômicas a 

politômicas e utrículos simples. Em geral, os representantes do subgênero 

Shizocodium são mais numerosos do que os de Tylecodium. Neste estudo foram 

descritos 11 táxons: 3 pertencentes à Tylecodium e 8 a Shizocodium. 

Posteriormente, Setchell (1940) estabeleceu C. phasmaticum Setchell para o Hawaii 

e C. cranwelliae Setchell para Nova Zelândia. Tseng & Gilbert (1942) estudando a 

costa sul da China, estabeleceram C. bartlettii, C. papillatum e C. papillatum var. 

hainanense. Ainda na mesma década, B∅rgesen (1947) estabeleceu C. iyengarii e 

C. dwarkense encontradas na costa da Arábia (Ásia). 

A partir de 1950, os estudos taxonômicos sobre o gênero se intensificaram 

principalmente através das publicações de P. C. Silva, que não mediu esforços para 

reunir os representantes do gênero e compreender a sua variabilidade morfológica. 

Silva (1951), estudando os representantes da Califórnia referenciou as espécies: C. 

fragile (Sur.) Hariot, C. cuneatum Setchell et Gardner, C. setchellii Gardner, C. 

hubbsii Dawson e estabeleceu C. johnstonei Silva. Silva (1952) ao estudar os 

representantes de Codium para as ilhas do Hawaii, registrou a ocorrência de C. 

arabicum Kuetzing, C. spongiosum, C. mamillosum Harvey, C. edule Silva, C. 

phamasticum Setchell e C. reediae Silva, estas três últimas, na época, consideradas 

endêmicas. Silva (1955) registrou para a Inglaterra a ocorrência de C. vermilara 

(Olivi) Delle Chiaje, C. tomentosum Stackhouse, C. fragile subsp. tomentosoides e 

uma nova subespécie C. fragile (Sur.) Hariot subsp. atlanticum (Cotton) Silva. Silva & 

Wormersley (1956) registraram a ocorrência de 15 táxons infragenéricos para o


Sudeste da Austrália, dos quais, 5 foram estabelecidos pelos autores: C. 

capitulatum, C. duthieae, C. harveyi, C. australicum e C. spinescens. Silva (1957) 

registrou para a Escandinávia a ocorrência de C. vermilara (Olivi) Delle Chiaje, C. 

fragile subsp. tomentosoides , C. fragile subsp. atlanticum e uma nova subespécie, 

C. fragile (Sur.) Hariot subsp. scandinavicum Silva. Silva (1959), estudando os 

representantes de Codium ocorrentes na África do Sul e área adjacente de 

Moçambique registrou 19 táxons. Além disso, o referido autor fez importantes 

comentários sobre a distribuição e habitat destes organismos. 

Williams (1980), estudando Codium para a costa Beaufort (Norte da Carolina), 

referenciou três espécies: C. dichotomum (Huds.) S. F. Gray, C. isthmocladum e C. 

decorticatum. Além disso, fez importantes comentários sobre a reprodução, 

crescimento, distribuição e ocorrência de vários predadores, como peixes, 

caranguejo aranha (Libinia dubia Milen-Edwards) e molusco (Fasciolaria tulipa L.). 

Jones & Kraft (1984), estudando o gênero Codium para as Ilhas Lord Howe (N.S.W.) 

situadas ao sul da Austrália, registraram a ocorrência de C. arabicum, C. 

spongiosum, C. bulbopilum Setchell, C. extricatum Silva e C. platyclados R. Jones & 

Kraft, que foi estabelecida neste trabalho pelos referidos autores. Lawson & John 

(1987), num inventário das algas marinhas no oeste tropical da África, registraram C. 

taylorii, C. decorticatum e C. guineënse Silva, Lawson & John. Pedroche & Silva 

(1996), estabeleceram C. picturatum F. F. Pedroche & P. C. Silva para o Pacífico 

tropical do México. Van Den Heede & Coppejans (1996) estudaram o gênero 

Codium para o Quênia, Tanzânia e as Ilhas Seycheles e registraram 14 táxons. 

Chacana et al. (1998) ao analisarem o gênero Codium para as Ilhas Canárias, 

registraram a ocorrência de espécies com talo prostrado, C. adhaerens (Cabrera) C. 

Agardh, C. effussum (Rafinesque) Delle Chiaje e C. intertextum. Esta última foi, por 

muito tempo, erroneamente identificada como C. adhaerens. 

Littler & Littler (2000), ao analisarem as algas marinhas da região do Caribe, 

registraram C. intertextum, C. ovale Zanardini, C. repens, C. carolinianum Searles, 

C. decorticatum e C. taylorii. Pedroche et al. (2002) registraram 13 espécies para o 

Pacífico tropical mexicano, dentre estas, duas espécies são novas para a ciência (C. 

schimiederi P. C. Silva, F. F. Pedroche & M. E. Chacana e C. dawsonii P. C. Silva, 

F.F. Pedroche & M. E. Chacana) e quatro (C. amplivesciculatum Setchell & Gardner, 

C. schmiederi Silva, Pedroche & Chacana, C. giraffa Silva e C. brandegeei Setchell 

& Gardner) foram consideradas endêmicas do Pacífico mexicano. Chang et al. 

(2002) abordando sobre o “complexo Codium geppiorum” no sul do Taiwan,


identificaram os seguintes táxons: C. edule P. C. Silva, C. geppiorum O. C. Schmidt 

e uma nova espécie, C. nanwanense J. S. Chang. Chacana et al. (2003) ao 

analisarem o gênero Codium para as Ilhas Canárias, registraram duas novas 

ocorrências, C. guineense e C. elisabethae Schimidt e uma nova espécie, C. 

profundum Silva & Chacana. Para o estabelecimento desta espécie, os autores se 

basearam em material recoletado nas Ilhas Canárias, além de outras localidades, 

incluindo o Brasil, que se encontrava depositado no Herbário da Universidade da 

Califórnia, Berckeley (UC). A partir desse estudo, a presença desta espécie foi 

registrada pela primeira vez para a costa brasileira. 

2.2 – NACIONAL 

No Brasil, os primeiros registros de Codium foram realizados no século XIX 

durante as grandes expedições científicas e viagens de circunavegações pelos 

pesquisadores estrangeiros. A maioria destas publicações foi apresentada sob a 

forma de lista e/ou pequenas descrições (Oliveira Filho 1977). 

No século XIX, Martius et al. (1833) listaram a ocorrência de C. decorticatum 

(como C. decumbens Martius) para o Rio de Janeiro e para a Bahia. Kützing (1849) 

referenciou para o Rio de Janeiro C. decorticatum (como C. elongatum C. Agardh) e 

C. intertextum (como C. adhaerens (Cabrera) C. Agardh). Martens (1866) registrou a 

ocorrência de C. taylorii (como C. tomementosum var. divaricatum C. Agardh) para o 

Rio de Janeiro. Martens (1870) referenciou a ocorrência de C. intertextum (como C. 

adhaerens.), C. isthmocladum (como C. tomentosum.) e C. taylorii (como C. 

tomentosum var. divaricatum C. Agardh). Martens (1871) registrou a ocorrência de 

C. decorticatum (como C. elongatum), C. intertextum (como C. tomentosum var. 

coralloides Kützing), C. isthmocladum (como C. tomentosum var. tenue Kützing) e C. 

taylorii (como C. tomentosum var. divaricatum) com base no material coletado por 

Glaziou no Rio de Janeiro. Dickie (1874a) fez a ocorrência para o Arquipélago de 

Fernando de Noronha, Estado de Pernambuco, de C. tomentosum (como C. 

isthmocladum). Dickie (1874b) referenciou a ocorrência de C. repens (como C. 

tomentosum) para o litoral baiano. De Toni (1889) registrou para o litoral brasileiro a 

ocorrência de C. decorticatum (como C. elongatum) e C. isthmocladum (como C. 

lineari C. Agardh). Möbius (1890) referenciou para o litoral do Rio de Janeiro C. 

decorticatum (como C. elongatum), C. intertextum (como C. adhaerens) e C. 

tomentosum. Murray (1891) listou C. isthmocladum para o Arquipélago de Fernando 

de Noronha.


No início do século XX, Howe (1928) citou a ocorrência de C. decorticatum para o 

litoral do Rio de Janeiro e C. intertextum para o litoral da Bahia. Luetzelburg 

(1922/23) citou C. intertextum (como C. adhaerens) para o litoral do Rio de Janeiro e 

C. isthmocladum (como C. tomentosum) para os litorais do Rio de Janeiro, Ceará e 

Paraíba. Schmidt (1924) citou C. intertextum (como C. adhaerens) e C. 

isthmocladum (como C. tomentosum) para o Rio de Janeiro. Taylor (1930) fez 

referência a C. taylorii (como C. pilgeri Schmidt) com base em material coletado na 

costa brasileira pelas Expedições "Hassler, Albatross and Schmitt". Taylor (1931) fez 

uma sinopse de todas as espécies até então referidas para o litoral brasileiro, 

registrando quatro espécies de Codium: C. decorticatum, C. intertextum, C. taylorii e 

C. isthmocladum (como C. pilgeri). Willians & Blomquist (1947) citaram para o litoral 

do Estado de Pernambuco e Fernando de Noronha a ocorrência de C. isthmocladum 

(como C. dichotomum). Silva (1960) analisou o gênero Codium para o Atlântico 

Ocidental Tropical, com base em material depositado nos diversos herbários dos 

países do Continente Americano, incluindo o do Brasil (Herbário SPF, da 

Universidade de São Paulo), onde registrou C. intertextum e C. taylorii (para São 

Paulo), C. repens (para Pernambuco e Fernando de Noronha) e C. spongiosum 

(para o Espírito Santo). Taylor (1960) analisou a flora tropical e subtropical das 

Américas, e referenciou a ocorrência de C. intertextum, C. spongiosum, C. repens, 

C. isthmocladum, C. decorticatum e C. taylorii para o litoral brasileiro. 

Nos meados do século XX, iniciaram-se os estudos ficológicos por pesquisadores 

brasileiros, começados por A. B. Joly e, posteriormente, por ele e seus discípulos 

provenientes de outras localidades do País. De acordo com a Tabela 1, observa-se 

que há uma deficiência de estudos visando a taxonomia do grupo. A maioria das 

informações dos representantes de Codium está contida em levantamento de flora 

de diversas localidades da costa brasileira, com exceção para o trabalho de Alves & 

Moura (2005) que trata exclusivamente da taxonomia deste grupo na Ilha de 

Itaparica (Bahia). Em termos gerais, verifica-se que o maior conhecimento está 

direcionado aos representantes que ocorreu na região entre-marés, mesmo assim, 

com alguns trechos do litoral com ausência total de coletas. 

Dos poucos estudos desenvolvidos na região de infralitoral (Tabela 1), a maioria 

foi realizada através de dragagens e nesta região cinco espécies foram registradas: 

C. decorticatum, C. intertextum, C. isthmocladum, C. spongiosum e C. taylorii (Joly & 

Braga 1966, Teixeira et al. 1985, Ferreira et al. 1988, Pereira 1974, Ugadim &


Pereira 1978, Oliveira Filho 1976, Pereira 1983, Pereira et al. 1981, Yoneshigue & 

Valentin 1988, Yoneshigue- Valentin et al. 2006). 

Quanto aos ambientes insulares, apesar do referido gênero estar representado 

por seis táxons infragenéricos (C. decorticatum, C. intertextum, C. isthmocladum, C. 

repens, C. taylorii e C. tomentosum), o conhecimento ainda é insipiente, tendo em 

vista a dificuldade de coleta para estas áreas. Mesmo assim, o Arquipélago de 

Fernando de Noronha se destaca por deter um maior número de trabalhos 

desenvolvidos (Villaça et al. 2006). 

2.3 - BIOLOGIA MOLECULAR 

Poucos são os estudos enfocando a biologia molecular no gênero Codium, e a 

maioria destes está relacionado ao sequenciamento de genes do cloroplasto de 

algumas espécies. 

Francis et al. (1987) observaram uma nova variedade de RNA 4.5 S do 

cloroplasto de Codium fragile (Suringar) Hariot., concluindo que este RNA carrega 

pouca homologia dos 4.5 S encontrados em plantas terrestres. 

Manhart et al. (1989) realizaram o mapeamento completo do genoma do 

cloroplasto de C. fragile, onde determinaram as posições de vários genes que não 

compartilham semelhanças notáveis aos outros consensos de plantas vasculares ou 

a qualquer genoma plastidial de clorofíceas e briófitas. 

Goff et al. (1992) compararam os padrões de restrição RFLP (Polimorfismo no 

Comprimento de Fragmentos de Restrição) do DNA do cloroplasto entre duas 

subespécies de C. fragile (C. fragile subsp. fragile e C. fragile subsp. tomentosoides), 

provenientes da Baía São Francisco (EUA) e do Atlântico, e observaram que os 

padrões em ambas eram distintos, demonstrando o potencial para se usar dados 

moleculares para resolver problemas taxonômicos em Codium. 

Pedroche (2001) analisou fragmentos de 716 pares de base do LSU rDNA 

(gene que codifica a subunidade grande do RNA ribossomal) do genoma 

mitocondrial para 10 táxons de Codium ocorrentes no Pacífico mexicano. As 

tipologias obtidas neste estudo confirmaram a existência de grupos monofiléticos e 

que o LSU do rDNA mitocondrial é um marcador adequado para propor hipóteses 

filogenéticas neste gênero. 

Shimada et al. (2004) analisaram o primeiro exon do gene rbcL (fragmento cerca 

de 613 pares de base) que codifica a subunidade grande da Rubisco localizado no


genoma do cloroplasto para 18 espécies de Codium e concluíram que este marcador 

foi apropriado na distinção entre espécies. 

Recentemente, Verbruggen et al. (2007) fizeram uma ampla análise, incluindo 74 

táxons de Codium de diversas localidades, baseando-se em 227 seqüências do 

exon 1 do gene rbcL para propor relações filogenéticas e fitogeográficas dentro do 

gênero. Nesse estudo, os referidos autores relatam a enorme dificuldade na 

delimitação taxonômica de algumas espécies de Codium, principalmente para os 

representantes que fazem parte de “complexos morfológicos”, como exemplo C. 

geppiorrum, pois como demostra em seus resultados, esta se encontra em mais de 

um clado monofilético. 

Apesar de serem inexistentes as pesquisas utilizando a biologia molecular para 

auxiliar a taxonomia do gênero Codium no litoral brasileiro, o potencial que este 

estudo oferece para a resolução de problemas taxonômicos é inquestionável como 

demonstrado por Goff et al. (1992). Observa-se, ainda, que a aplicação de técnicas 

moleculares vem subsidiando o desenvolvimento de importantes trabalhos sobre as 

relações filogenéticas e fitogeográficas entre as populações de algas marinhas 

bentônicas (Oliveira 2001).


Tabela 1 - Trabalhos florísticos realizados no Brasil pelos pesquisadores brasileiros onde há citação do gênero Codium. 

Táxons 

C. decorticatum 

C. intertextum 

C. isthmocladum 

C. repens 

C. spongiosum 

C. taylorii 

C. tomentosum 

Piauí 

▲43 

Ceará 

▲6, 

▲39 

▲4, 

▲33, 

▲39 

Rio Grande 

do Norte 

Região Nordeste Região Sudeste Região Sul Ambientes Insulares 

Paraíba 

Pernambuco 

Alagoas 

Bahia 

▼21 ▼22 ▼18, ●44, ●50 ▲47, ▼49 

▼21, 

▲38 

▼22, 

▲24, 

▼29 

▲39 ▼22 

▲42, ●44 

▼12, ▼ 18, 

▼29, ▲40, 

▲42, ●44, ▲45, 

●50 

▼29 

▲34, ▲37, 

▲47 

▲34, ▲47, 

▼49 

Espírito 

Santo 

▲8, ▼27, 

▲46, ▼49 

▲8, ▼27, 

▲46, ▼49 

▲8, ▼14, 

▲16, 

▼27, 

▲46, ▼49 

▲42, ●44 ?13 ▲47 ▲46, ▼49 

▲9, ▲40, ▲42, 

●44 

▼49 

▲34, ▲47, 

▼49 

▲8, ▼14, 

▲46, ▼49 

▲8, ▲46, 

▼49 

Rio de 

Janeiro 

▲7, ▲25, 

▲26, ▼30, 

▲35, ▲41, 

▼49 

▲26, ▼30, 

▲35, ▲41 

▼5, ▲19, 

▲25, ▲26, 

▼30, ▼49 

▲26, ▼30, 

▲7, ▲25, 

▲26, ▲35, 

▲41, ▼49 

São 

Paulo 

▲3, 

▲17 

▲3, 

▲11 

Paraná 

▲11 

Santa 

Catarina 

▲20, 

▲23 

▲20, 

▲23 

▲3 ▲23 

▲2, 

▲11 

Rio Grande 

do Sul 

▲10 

Arquipélago 

de Fernando 

Noronha 

●28, 

▲32, 

●44, ●48 

●28, 

▲36, 

●44, ●48 

▲36, 

●44, ●48 

▲23 ●44, ●48 

▲36, 

●44, ●48 

Arquipélago 

de Trindade 

▲31 

, 

●48 

Arquipélago 

de Abrolhos 

●48 

▼1 ●48 

Codium sp. ▼49 ▼49 ●48 

Atol das 

Rocas 

●48 ▲15 

▲= Região entre marés; ▼= Região infralitoral, ●= Ambas as regiões, ?= Região indeterminada, 1 - Joly (1953), 2 - Joly (1957), 3 - Joly (1965), 4 - Ferreira & Pinheiro (1966), 5 - Joly 

& Braga (1966), 6 - Pinheiro-Vieira & Ferreira (1968), 7 - Yoneshigue-Braga (1970), 8 - Behar (1972), 9 - Fonseca (1972), 10 - Baptista (1973), 11 - Ugadim (1973), 12 - Pereira 

(1974), 13 - Oliveira Filho (1974), 14 - Oliveira Filho (1976), 15 - Oliveira Filho & Ugadim (1976), 16 - Mitchell & Schindo (1977), 17 - Oliveira Filho & Berchez (1978), 18 - Ugadim & 

Pereira (1978), 19 - Mitchell et al. (1979), 20 - Citadini- Zanette et al. (1979), 21 - Pereira et al. (1981), 22- Pereira (1983), 23 - Santos (1983), 24 - Kanaguawa (1984), 25 - Pedrini 

(1984), 26 - Yoneshigue (1985), 27 - Teixeira et al. (1985), 28 - Eston et al. (1986), 29 - Ferreira et al. (1988), 30 - Yoneshigue & Valentin (1988), 31 - Pedrini et al. (1989), 32 - 

Szechy et al. (1989), 33 - Miranda & Pereira (1989/90), 34 - Martins et al. (1991), 35 - Falcão et al. (1992), 36 - Pedrini et al. (1992), 37 - Santos (1992), 38 - Araújo (1993), 39 - 

Dantas (1994), 40 - Angeiras (1995), 41 - Gestinari et al. (1998), 42 - Pereira & Accioly (1998), 43 - Batista (2000), 44 - Pereira et al. (2002), 45 - Oliveira-Carvalho et al. (2003), 46 - 

Barata (2004), 47 - Alves & Moura (2005) , 48 - Villaça et al. (2006), 49- Yoneshigue-Valentin et al. 2006 e 50- Pereira et al. 2007.


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4 - RESULTADOS 

4.1 - Manuscrito I 

O gênero Codium Stackhouse (Bryopsidales – Chlorophyta) no Brasil: 

taxonomia e distribuição geográfica. 

O trabalho será enviado para a REVISTA NOVA HEDWIGIA


O gênero Codium Stackhouse (Bryopsidales – Chlorophyta) no Brasil: 

taxonomia e distribuição geográfica 

Maria de Fátima de Oliveira-Carvalho 1,3 , Sonia Maria Barreto Pereira 1,3 e Francisco Flores 

Pedroche 2 

1- Programa de Pós-Graduação em Botânica (PPGB) - Universidade Federal Rural de 

Pernambuco (UFRPE). Avenida Dom Manoel de Medeiros, S/N. 52171-900. Dois Irmãos, 

Recife, PE, Brasil. 

2. Departamento de Hidrobiología da Universidad Autónoma Metropolitana - Iztapalapa. 

Apdo Postal 55- 535. México, D. F. 09340, México. 

3. correspondência para autor: mfocarvalho@yahoo.com.br; soniabp@terra.com.br


Resumo: Codium Stackhouse é um gênero marinho, com distribuição cosmopolita, 

representado por 125 táxons infragenéricos. No litoral brasileiro o conhecimento sobre os 

representantes do gênero Codium está restrito a poucos trabalhos desenvolvidos em 

levantamentos florísticos gerais em diferentes localidades. O objetivo deste trabalho é 

apresentar o levantamento de Codium no litoral brasileiro com ênfase na taxonomia e 

distribuição de seus representantes. Para a realização deste estudo, o material foi coletado em 

diversas praias do litoral brasileiro, além da análise das exsicatas depositadas nos herbários 

nacionais e internacional da Califórnia (Berkeley-UC). Com este estudo, sete táxons foram 

reconhecidos: C. decorticatum, C. intertextum, C. isthmocladum, C. repens, C. spongiosum, 

C. taylori e Codium sp. A partir deste trabalho, C. profundum está sendo considerado como 

Codium sp e C. tomentosum como uma espécie duvidosa para o litoral brasileiro. Devido a 

grande plasticidade morfológica encontrada em C. decorticatum, C. isthmocladum e C. 

taylorii houve dificuldade na identificação de alguns espécimes. C. isthmocladum, C. 

decorticatum, C. taylorii e C. intertextum foram as que apresentaram maior distribuição na 

costa brasileira. 

Palavras-chave: Clorofíceas, Codiaceae, Atântico Americano, costa brasileira, morfologia e 

taxonomia. 

Abstract: Codium Stackhouse is a marine genus, with cosmopolitan distribution, represented 

by 125 infrageneric taxa. In Brazilian littoral the knowledge about Codium is restricted to few 

works developed on general floristic surveys in different localities. The aim of the present 

work is to present the survey of Codium in the Brazilian littoral with emphasis to the 

taxonomy and distribution of their representatives. In this study the material was sampled in 

many beaches of the Brazilian littoral, besides the analysis of excicates deposited in the 

Brazilian and Californian (Berkeley-UC) herbaria. Through this study, seven taxa were 

recognized: C. decorticatum, C. intertextum, C. isthmocladum, C. repens, C. spongiosum, C. 

taylorii and Codium sp. With this work, C. profundum is considered as Codium sp. and C. 

tomentosum as a doubtful species to the Brazilian littoral. Because of the great morphological 

plasticity found in C. decorticatum, C. isthmocladum and C. taylorii there was difficulty in 

the identification of some speciemens C. isthmocladum, C. decorticatum, C.taylorii and C. 

intertextum were those which represent the greater distribuiton in the Brasilian coast 

Key words: Chlorophyceae, Codiaceae, American Atlantic, Brazilian coast, morphology and 

taxonomy.


Introdução 

Codium Stackhouse é um gênero cosmopolita, pertencente à família Codiaceae, phylum 

Chlorophyta. Seus representantes são exclusivamente marinhos, ocorrendo desde a franja do 

mesolitoral até 200m de profundidade (Pedroche et al. 2002). O talo caracteriza-se pelo 

aspecto esponjoso, devido ao entrelaçamento dos filamentos cenocíticos (Graham & Wilcox 

2000). 

A ampla plasticidade fenotípica apresentada pelo gênero tem sido referida por diversos 

autores e parece estar relacionada ao elevado grau de variabilidade morfológica dentro e entre 

populações (Silva 1951; Pedroche et al. 2002). Aproximadamente, 40% das espécies 

reconhecidas para o gênero são distintas macromorfologicamente, enquanto que as outras 

formam grupos complexos de intricada variação morfológica (Silva 1998). Em conseqüência 

disto, a taxonomia de Codium tem-se tornado bastante complexa e confusa (Chacana et al. 

1996). 

Atualmente, o gênero engloba 125 táxons infragenéricos, distribuídos principalmente entre as 

zonas temperada e subtropical como no Japão (19 táxons), na África do Sul (19 táxons), na 

Austrália (18 táxons) e na costa do Pacífico no México (13 táxons) (Goff et al. 1992; 

Pedroche 2001; Pedroche et al. 2002). Na flora tropical e subtropical do Atlântico Ocidental, 

estão registrados nove táxons, uma subespécie e uma variedade (Wynne 2005). 

Para o Brasil, oito táxons têm sido referidos: C. decorticatum (Woodw.) M. Howe, C. 

intertextum Collins & Herv., C. isthmocladum Vickers, Codium profundum P. C. Silva & M. 

E. Chacana, C. repens Vickers, C. spongiosum Harv., C. taylorii P. C. Silva e C. tomentosum 

Stackhouse (Silva 1960; Pereira et al. 2002; Chacana et al. 2003, Yoneshigue-Valetin et al. 

2006; Pereira et al. 2007). Este conhecimento está restrito a poucos trabalhos desenvolvidos 

em levantamentos florísticos gerais em diferentes localidades (Joly 1957, 1965; Yoneshigue- 

Braga 1970; Ugadim 1973; Ugadim & Pereira 1978; Pereira et al. 1981; Teixeira et al. 1985; 

Yoneshigue & Valentin 1988; Pereira & Accioly 1998; Pereira et al. 2002; Oliveira-Carvalho 

et al. 2003; Yoneshigue-Valetin et al. 2006; Pereira et al. 2007). Recentemente, Alves & 

Moura (2005) referenciaram para a Ilha de Itaparica (Estado da Bahia), C. decorticatum, C. 

intertextum, C. isthmocladum, C. repens e C. taylorii. 

O presente trabalho tem como objetivo apresentar o levantamento de Codium no litoral 

brasileiro com ênfase na taxonomia e distribuição de seus representantes.


Material e métodos 

Os estudos foram baseados em espécimes coletados nas diferentes regiões geográficas do 

litoral brasileiro, bem como, em exsicatas depositadas predominentemente em herbários 

nacionais indexados. 

Os exemplares foram coletados no período de abril de 2005 a outubro de 2006. A coleta foi 

realizada nos trechos do litoral das regiões Nordeste (Estados da Paraíba - PB, Pernambuco - 

PE, Sergipe - SE e Bahia - BA), Sudeste (Estados do Espírito Santo - ES, Rio de Janeiro - RJ 

e São Paulo - SP) e Sul (Estados de Santa Catarina – SC e Rio Grande do Sul - RS). Os 

estados brasileiros foram escolhidos de acordo com a representatividade do gênero na flora 

local, conforme levantamentos bibliográficos e herbários consultados. As coletas foram 

realizadas na região entre-marés, durante as baixas marés, com auxílio de espátulas e quando 

necessário através de mergulhos livres nas poças recifais. Os espécimes foram conservados 

em solução de formaldeído (4%). 

Foram analisadas exsicatas dos herbários brasileiros: PB (Lauro Pires Xavier - JPB), PE 

(Professor Vasconcelos Sobrinho – PEUFR), BA (Alexandre Leal Costa – ALVB e o da 

Universidade Estadual de Feira de Santana - HUEFS), RJ (Jardim Botânico do Rio de Janeiro 

- RB; Museu Nacional - R; Universidade Estadual do Rio de Janeiro - HB e o da Universidade 

Federal do Rio de Janeiro - RFA); SP (Instituto de Botânica - SP e Instituto de Biociências da 

Universidade São Paulo-SPF) e Santa Catarina (Horto Botânico - Flor). Foi também analisado 

o material designado como C. profundum depositado no Herbário da Universidade da 

Califórnia (Berkeley – UC). Foram analisadas exsicatas de Codium da região entre-marés, e 

do infralitoral, através do material dragado pelas expedições oceanográficas a seguir listadas. 

Almirante Saldanha (entre os Estados da Bahia e do Espirito Santo, 1967), Akaroa (entre os 

Estado de Alagoas e de Sergipe, 1965), Canopus (entre os Estado do Ceará e de Sergipe, 

1965-1966) e Comissão Recife (no Estado de Pernambuco, 1966-1967) (Guimarães et al. 

1981). Quando necessário, foi procedida a correção taxonômica das exsicatas. 

A identificação das espécies foi baseada nos caracteres morfológicos (hábito, padrão de 

ramificação e dimensões dos ramos), anatômicos (diâmetro dos filamentos medulares, 

morfologia e dimensões dos utrículos e disposição de pêlos ou cicatrizes) e reprodutivos 

(morfologia, dimensões e inserção dos gametângios) adotados por Silva (1951; 1959), Silva & 

Womersley (1956), Chacana et al. (1988), Van den Heede & Coppejans (1996) e Pedroche et 

al. (2002). Para cada estrutura analisada, foram feitas, quando possível, 20 medições com 

auxílio de uma ocular micrométrica Zeiss e calculadas as médias, que se encontram nas 

descrições das espécies, sendo fornecidas, ainda, os valores mínimos e máximos. A ilustração


do aspecto geral do talo foi feita através de câmara digital Canon Power Shot 4.0. Para uma 

melhor visualização e contraste das estruturas anatômicas e reprodutivas, foi utilizada solução 

aquosa de azul de anilina a 1% e as imagens obtidas em microscópio estereoscópio Zeiss 

acoplado a câmara fotográfica digital. O material coletado foi herborizado segundo as técnicas 

usuais em ficologia marinha e as exsicatas incorporadas ao Herbário – PEUFR. Devido ao 

grande número de exemplares de Codium analisado e a delimitação do número de páginas na 

publicação, serão citados apenas os exemplares representativos dos Estados brasileiros. Na 

relação do material examinado, o coletado será distinguido dos demais pelo sinal (*). 

O posicionamento taxonômico das subordens e seções foi baseado nos trabalhos de Setchell 

(1937), Silva (1951) e Verbruggen et al. (2007). A identificação das espécies foi feita com 

base em Joly (1965), Taylor (1960), Silva (1952; 1960), Van den Heede & Coppejans (1996), 

Littler & Littler (2000), Chang et al. (2002) e Chacana et al. (2003). 

Resultados e discussão 

Foram identificadas sete espécies de Codium para a costa brasileira, pertencem ao 

subgênero Tylecodium as espécies: C. intertextum (seção Adhaerentia) e C spongiosum (seção 

Spongiosa) e ao subgênero Shizocodium as espécies: C. isthmocladum, C. repens e Codium sp 

(seção Tomentosa) e C. decorticatum e C. taylorii (seção Elongata). 

Chave de identificação para as espécies de Codium do litoral brasileiro. 

1a. Formas prostradas, não ramificadas; utrículos agrupados (subgênero 

Tylecodium).................................................................................................................................2 

2a. Talo crostoso, de forma irregular, fortemente aderido ao substrato; utrículos menores 

que 1000 µm de comprimento (Seção Adhaerentia) .................................C. intertextum 

2b. Talo pulvinado, subgloboso, frouxamente aderido ao substrato; utrículos maiores 

que 1000 µm de comprimento (Seção Spongiosa)................................C. spongiosum 

1b. Formas eretas, ramificações dicotômicas a politômicas; utrículos individuais (subgênero 

Shizocodium)...............................................................................................................................3 

3a. Ramos cilíndricos a subcilíndricos......................................................... (Seção Tomentosa) 

4a. Ramo cilíndrico, talo ereto, ramificação dicotômica regular, utrículo de ápice 

espessado e lamelado............................................................................. C. isthmocladum 

4b. Ramo subcilíndrico, talo ereto, ramificação dicotômica irregular, utrículo de ápice 

delgado............................................................................................................. Codium sp. 

4c. Ramo cilíndrico a subcilíndrico, talo procumbente, ramificação dicotômica irregular 

a divaricata, tufos densamente entrelaçados semelhante a novelos com ramos


anastomosados, utrículo de ápice delgado......................................................... C. repens 

3b. Ramos complanados.................................................................................. (Seção Elongata) 

5a. Ramo totalmente complanado, ramificação dicotômica irregular, ápices dos ramos 

com crescimento desigual a cervicornes............................................................ C. taylorii 

5b. Ramo complanado apenas nas dicotomias; cuneados; ramificação geralmente 

dicotômica, raramente politômica; ápice com crescimento igual ............C. decorticatum 

Descrição e comentários das espécies analisadas 

Codium decorticatum (Woodw.) M. Howe Figs: 1-8 

Bulletim of the Torrey Botanical Club 38: 494, 1911. 

Localidade tipo: Mar Mediterrâneo. 

Basiônimo: Ulva decorticata Woordward, Trans. Linn. Soc., p. 55, 1797. 

Talo ereto, coloração verde-escura, com até 38 cm de altura, fixo ao substrato por um 

apressório basal discóide. Ramificação predominantemente dicotômica regular, às vezes 

politômica. Ramos frequentementes cilíndricos, exceto nas dicotomias cuneatas, com evidente 

achatamento. Filamentos medulares incolores medindo 40 (55) 70 μm de diâmetro, com 

espessamento lenticular 20 (40) 60 μm. Utrículos individuais, clavados a cilíndricos, 

raramente piriformes, medindo 90 (340) 550 μm de diâmetro e 870 (1.132) 2.125 μm de 

comprimento. Ápice do utrículo arredondado, truncado ou com leve depressão central, parede 

apical delgada de até 20 μm de espessura. Pêlos ou cicatrizes de pêlos distando de 80 (115) 

232 μm do ápice do utrículo. Gametângios de 1 a 2 distribuídos por utrículo, ovóides, 

lanceovóides a lanceolados, 70 (87) 140 μm de diâmetro e 120 (229) 325 μm de 

comprimento, crescendo sobre curto pedicelo, distantes 210 (468) 669 μm do ápice do 

utrículo. 

Material examinado: Ceará: PEUFR 17811: 26/11/1992 - N.P.Dantas. Paraíba: PEUFR 

48539: 22/07/2005 - M.F. Oliveira-Carvalho & P.A. Horta (*). Pernambuco: PEUFR 48537: 

04/12/2005 - S.M.B. Pereira et al. (*). Alagoas: SPF 573: 29/01/1965 - E.C. Oliveira. Bahia: 

PEUFR 48534: 18/09/2005 - M.F. Oliveira-Carvalho & M.C. Accioly (*). Espírito Santo: 

PEUFR 48526: 01/04/2006 - S.M.P.B. Guimarães & G. Amado Filho (*). Rio de Janeiro: 

PEUFR 48532: 11/06/2006 - L.M.S. Gestinari (*). São Paulo: SPF 575: 21/07/1963 - A.B. 

Joly. Paraná: SPF 53323: 11/10/1985 - M.T. Shirata et al. Santa Catarina: PEUFR 48530: 

01/04/2006 - M.F. Oliveira-Carvalho et al (*); PEUFR 48529: 21/09/2006 - M.F. Oliveira- 

Carvalho & P.A. Horta (*). Rio Grande do Sul: PEUFR 48524: 24/03/2006 - D. Barata (*).


Expedições Oceanográficas: SPF 5180: 8/09/1965 – Akaroa Est. 42 (09 0 32 ’ 05 ” S e 35 0 20 ’ 35 ” 

W), profundidade (31 m); SPF 027300: 7/09/1965 – Akaroa Est. 57 (09 0 46 ’ 10 ” S e 35 0 24 ’ 45 ” 

W), profundidade (45 m); SPF 027302: 18/02/1967 – Recife Est. 100 (08 0 17 ’ 04 ” S e 34 0 52 ’ 2 ” 

W), profundidade (22,5 m). 

Comentários: Os espécimes foram encontrados na zona entre-marés, crescendo sobre os 

recifes da Região Nordeste (Bahia) e sobre os costões rochosos das Regiões Sudeste (Rio de 

Janeiro e Espírito Santo) e Sul (Santa Catarina e Rio Grande do Sul). No litoral de Santa 

Catarina, na região entre-marés, extensas populações foram encontradas crescendo recobertas 

por areia. No infralitoral, a referida espécie foi encontrada na profundidade de 45 m (SPF 

027300). 

Alguns exemplares coletados na região entre-marés abrigavam como epífitas Ceramium 

brevizonatum H. E. Petersen, C. dawsonii A. B. Joly, Erythrotrichia carnea (Dillwyn) J. 

Agardh, Hydrolithon chamaedoris (Foslie & M. Howe) M. J. Wynne, Hypnea musciformis 

(Wulfen) J. V. Lamour., Rhodothamniella codicola (B∅rgesen) C. Bidoux & F. Magne, 

Gymnothamnion sp. e Ectocarpus sp. Nos costões alguns espécimes cresciam associados a 

Codium intertextum, Dictyopteris delicatula Lamour., Gelidiella acerosa (Forssk.) Feldmann 

& Hamel, Chondrophycus papillosus (C. Agardh) D. J. Garbary & J. T. Harper e 

Pneophyllum fragile Kütz. 

Os espécimes coletados na costa do Nordeste (PB, PE e BA) apresentaram talos de pequeno 

porte, robustos, cilíndricos a levemente achatados, podendo, em campo, serem confundidos 

com C. taylorii e C. isthmocladum. Silva (1960) ao estudar o referido gênero para o Atlântico 

tropical, verificou que alguns exemplares de C. decorticatum, C. taylorii e C. isthmocladum 

exibiam consideráveis combinações de caracteres, concluindo que poderia haver hibridização 

interespecifica. Os exemplares coletados em Santa Catarina (Região Sul) apresentaram talos 

mais desenvolvidos, com morfologia típica, ramos cilíndricos, dicotômicos, dicotomias 

cuneadas e espaçadas entre si. Os exemplares coletados no Estado do Espírito Santo (Região 

Sudeste) provenientes da região do infralitoral apresentavam ramos predominantemente 

subcilíndricos, com entrenós espaçados e dicotomias levemente cuneadas. 

Segundo Silva (1960), o grau de variação morfológica apresentada por esta espécie está 

fortemente influenciado pela idade da planta e pelos fatores ambientais. O referido autor 

comenta que talos de plantas jovens geralmente são cilíndricos a levemente achatados, 

enquanto que os talos adultos são freqüentemente achatados nas dicotomias. Ambientes de 

águas calmas e claras parecem conduzir para o desenvolvimento luxuriante dos espécimes, 

com dicotomias cuneadas e internós compridos e cilíndricos. Ambientes com águas


turbulentas favorecem o desenvolvimento de plantas de pequeno porte, com ramificações 

curtas e ramos freqüentemente cilíndricos. Anatomicamente, C. decorticatum se distingue por 

possuir utrículos de grandes tamanhos (geralmente acima de 1.000 µm) e o desenvolvimento 

dos mesmos está relacionado à idade da planta. As características apresentadas pelas plantas 

brasileiras correspondem aos comentários de Silva (1960), as descrições de Joly (1965), 

Taylor (1960) e Silva (1960) para os exemplares do Atlântico Tropical e Littler & Littler 

(2000) para a região dos mares do Caribe. 

Codium intertextum F.S. Collins & Harvey. Figs: 9-15 

Proceedings of the American Academy of Arts and Sciences 53: 54. 1917. 

Localidade Tipo: Bermuda 

Talo crostoso, de coloração verde-escura, de hábito prostrado, fortemente aderido ao substrato 

por vários tufos rizoidais. Crostas com expansões irregulares, margens lobadas livres ou 

frouxamente aderidas ao substrato. Filamentos medulares incolores com 21 (29) 35 μm de 

diâmetro, espessamento lenticular de 9 (16) 23 μm. Utrículos fortemente agrupados, de difícil 

dissociação, cilíndricos a ligeiramente clavados medindo 58 (103) 202 μm de diâmetro e 469 

(686) 914 μm de comprimento. Ápice do utrículo arredondado a truncado, com parede apical 

medindo 13 (18) 31μm de espessura. Pêlos ou cicatrizes de pêlos proeminentes, abundantes, 

distribuídos em faixas, distando 66 (97) 162 μm abaixo do ápice do utrículo. Gametângios 

distribuídos de 1 a 2 por utrículos, cilíndricos a fusiformes, medindo 58 (83) 108 μm de 

diâmetro e 188 (245) 292 μm de comprimento, crescendo sobre curto pedicelo, posicionados 

a 277 (323) 392 μm abaixo do ápice do utrículo. 

Material examinado: Pernambuco: PEUFR 12761: 13/04/1987 - M.C. Accioly. Alagoas: SPF 

577: 03/03/1965 - E. C. Oliveira Filho. Bahia: PEUFR 48551: 17/05/2005 - M.F. Oliveira- 

Carvalho & M.C. Accioly (*). Espírito Santo: PEUFR 48559: 20/07/2005 - S.M.P.Guimarães 

(*). Rio de Janeiro: PEUFR 48566: 27/07/2006 - M.F. Oliveira-Carvalho; V. Cassano & D. 

Barata (*). São Paulo: PEUFR 48562: 14/07/2006 - M. F. Oliveira-Carvalho & F. Bechez (*). 

Santa Catarina: PEUFR 48553: 27/11/2005 - S.M.P. Guimarães (*). Arquipélago de Fernando 

de Noronha: PEUFR 48567: 14/06/2006 - P.A. Horta (*). Atol das Rocas: SPF 25607; 

255609: 02/1972 - E.C. Oliveira Filho. Expedição Oceanográfica: SPF 026040: 8/09/1965 – 

Akaroa Est. 35 (09 0 27 ’ 50 ” S e 35 0 07 ’ 45 ” W), profundidade (33 m).


Comentários: Os espécimes foram coletados sobre os recifes da Região Nordeste (Bahia) em 

local com moderada arrebentação e sobre os costões rochosos das Regiões Sudeste (São Paulo 

e Rio de Janeiro) e Sul (Santa Catarina) formando extensos tapetes nas paredes verticais da 

região entre-marés. Algunas plantas foram encontradas compartilhando o mesmo substrato 

com C. taylorii no litoral de São Paulo e com C. decorticatum no litoral de Santa Catarina. 

Nos ambientes insulares, registra-se sua presença no Arquipélago de Fernando de Noronha e 

no Atol das Rocas. C. intertextum é uma espécie bastante comum na região entre-marés e no 

infralitoral a sua presença foi registrada a 33 m de profundidade, pela Expedição Akaroa-35 

(SPF026040). 

No material coletado, foi observada a ocorrência das epífitas Anadyomene stellata (Wulfen) 

C. Agardh, Bryopsis pennata J. V. Lamour., Caulerpella ambigua (Okamura) Prud`homme 

van Reine & G. M. Lokhorst, Cladophoropsis membranacea (C. Agardh) B∅rgesen, Ulva 

lactuca L., Phyllodictyon anastomosans (Harv.) G. T. Kraft & M. J. Wynne, Chaetomorpha 

antennina (Bory) Kutz., Hincksia mitchelliae (Harv.) P. C. Silva, Herposiphonia secunda (C. 

Agardh) Ambronn, Amphiroa anastomosans Weber van Bosse, Centroceras clavulatum (C. 

Agardh) Mont., Hypnea musciformis, Grateloupia sp., Tricleocarpa sp., Corallina sp. e 

Jania sp. Algunas plantas de C. intertextum cresciam em associação com Dictyosphaeria 

versluysii Weber van Bosse, Dictyopteris delicatula, Gelidiella acerosa e Chondrophycus 

papillosus. 

Nos espécimes analisados foram observadas algumas variações morfológicas nos talos que 

cresciam diretamente expostos à arrebentação, apresentando-se densamente enrugados e 

lobados, quando comparados com os que cresciam em locais moderadamente agitados. 

C. intertextum faz parte do “complexo Arabicum” constituído por um conjunto de 

microespécies ou subespécies amplamente distribuída por toda a Região Indo-Pacífica (Silva 

1962). Segundo este autor, C. intertextum está morfologicamente relacionado com C. 

adhaerens C. Agardh. No entanto, Chacana et al. (1988) afirmam que a morfologia do talo e o 

ápice do utrículo constituem importantes critérios para a separação de ambas as espécies. 

Ainda de acordo com os referidos autores, C. intertextum apresenta talos lobados, fortemente 

aderidos ao substrato, coloração verde-escura e utrículos clavados com ápices freqüentemente 

alveolados, enquanto que os talos de C. adhaerens formam camadas expandidas irregulares, 

levemente fixas ao substrato, coloração verde-clara e utrículos cilíndricos com ápices não 

ornamentados. 

De modo geral, as plantas analisadas correspondem às descrições e ilustrações feitas por 

Pereira & Accioly (1998) para Pernambuco (Brasil); Taylor (1960) e Silva (1960) para o


Atlântico tropical; Chacana & Gil-Rodrigues (1993) e Chacana et al. (1988) para as Ilhas 

Canárias; Littler & Littler (2000) para a região dos mares do Caribe. 

Codium isthmocladum Vickers Figs: 16-25 

Annales des Sciences Naturalles, Botanique, Ser. 9:57. 1905. 

Localidade tipo: Barbados. 

Talo ereto, coloração verde-oliva, com até 20 cm de altura, fixo ao substrato por um 

apressório basal discóide. Ramificação predominantemente dicotômica regular. Ramos 

cilíndricos, ramificados até a 12 a ordem. Filamentos medulares incolores medindo 24 (30) 36 

μm de diâmetro, com espessamento lenticular de 21 (27) 35 μm. Utrículos individuais, 

clavados, cilíndricos, raramente piriformes, com 114 (193) 278 μm de diâmetro e 468 (623) 

736 μm de comprimento. Ápices dos utrículos arredondados, truncados, espessados e 

lamelados, medindo 30 (42) 55 μm de espessura. Pêlos ou cicatrizes de pêlos situados abaixo 

do ápice do utrículo, distando 48 (68) 91 μm. Gametângios distribuídos de 1 a 2 por utrículos, 

ovóides, lanceovóides a fusiformes, medindo 61 (83) 106 μm de diâmetro e 149 (199) 232 μm 

de comprimento, distando 198 (237) 297 μm do ápice do utrículo. 

Material examinado: Piauí: PEUFR 30584: 11/09/1999 - M.G.S. Batista. Ceará: SPF 620: 

04/07/1964 - H. Matheus. Rio Grande do Norte: SPF 625: 21/07/1964 - E.C. Oliveira. 

Paraíba: PEUFR 48505: 11/02/2006 - M.F. Oliveira-Carvalho (*). Pernambuco: PEUFR 

48501: 19/01/2006 - S.M.B. Pereira et al.(*). Alagoas: SPF 618: 29/01/1965 - E. C. Oliveira 

Filho. Sergipe: PEUFR 49386: 03/2000 – Plataforma Continental de Sergipe, Estação 6. 

Petrobrás-UFSE. Bahia: PEUFR 48498: 18/09/2005 - M.F. Oliveira-Carvalho & M.C. 

Accioly (*). Espírito Santo: PEUFR 48494: 13/06/2006 - M. Pacheco (*). Rio de Janeiro: 

SPF 24648: 24/08/1983 - Jorcélio. São Paulo: PEUFR 48491: 14/07/2006 - M.F. Oliveira- 

Carvalho & F. Berchez (*). Paraná: PEUFR 1235: 6/09/1968 - Y. Ugadim. Santa Catarina: 

PEUFR 48496: 09/11/2005 - S.M.P.B. Guimarães & G.A. Filho (*). Arquipélago de Fernando 

de Noronha: PEUFR 21614: 08/03/1994 - S.M.B. Pereira. Expedições Oceanográficas: SPF 

005176: 12/01/1966 - Canopus Est. 93 (06 0 04 ’ 30 ” S e 34 0 52 ’ 00 ” W), profundidade (69 m); 

SPF 05266: 29/04/1967 – Recife Est.145 (08 0 05 ’ 07 ” S e 34 0 41 ’ 00 ” W), profundidade (37 m); 

SPF 4747: 08/09/1965 - Akaroa Est. 44 (09 0 32 ’ 05”S e 35 0 10 ’ 35”W), profundidade (40 m); 

SPF 027315: 26/09/1967 - Almirante Saldanha Est. D9 (17 0 00 ’ 0 ” S e 38 0 40 ’ 0 ” W), 

profundidade (47 m).


Comentários: Os espécimes foram coletados na região entre-marés, crescendo sobre os recifes 

da Região Nordeste (Paraíba, Pernambuco e Bahia) e sobre os costões rochosos das Regiões 

Sudeste (Espírito Santo, Rio de Janeiro e São Paulo) e Sul (Santa Catarina). Também foram 

encontrados exemplares crescendo na região de infralitoral, até 69 m de profundidade (SPF 

005176). Em geral, no litoral do Nordeste (PB, PE, SE) e Sudeste (ES) as plantas cresciam 

isoladas e quando agregadas formavam densos tufos sobre nódulos de algas calcárias. 

Alguns exemplares coletados abrigavam como epífitas: Padina gymnospora (Kütz.) Sond., 

Dictyota cervicornis Kütz., Dictyopteris delicatula, Ceramium brevizonatum, Sahlingia 

subintegra (Rosenv.) Kornnann, Hydrolithon chamaedoris, Gelidiella acerosa, Gelidium 

pusillum (Stackh.) Le Jolis, Herposiphonia secunda (C. Agardh) Ambronn, Hypnea 

musciformis e Jania sp. 

Os exemplares analisados neste estudo apresentaram uma marcada variação morfológica. Os 

espécimes da região de infralitoral exibiram talos com morfologia mais uniforme, quando 

comparados aos da região entre-marés. Na região do infralitoral, as plantas apresentaram-se 

mais desenvolvidas, com talos densamente ramificados e dicotomias espaçadas. Foram 

observadas plantas com morfologia semelhante, porém menos desenvolvidas em poças 

recifais do platô na região entre-marés. Plantas de menor porte, com talos densamente 

ramificados e dicotomias curtas, foram encontradas em ambientes agitados, tanto nos recifes 

como nos costões. 

Alguns exemplares do infralitoral provenientes do Nordeste (Sergipe) e do Sudeste (Espírito 

Santo) portavam estruturas propagativas denominadas de “Brutkorper”. O termo “Brutkorper” 

foi utilizado pela primeira vez por Schmidt, em 1923, para designar os gametângios abortivos 

modificados (Silva 1960). Aparentemente, estes propágulos são formados durante os períodos 

de temperaturas baixas, quando os gametângios não alcançam a maturidade (Williams 1980). 

Ainda de acordo com referido autor, em geral, gametângios funcionais e gametas são 

produzidos durante o verão. Entretanto, neste trabalho as estruturas propagativas só foram 

observadas nos meses de maio e junho (estação chuvosa) e ambas as estruturas (gametângio e 

propágulos) ocorriam simultaneamente. 

O propágulo se diferencia do gametângio por apresentar protuberância ou filamento 

estendido, coloração intensa, ausência de gametas e aberturas apicais (opérculos). 

Provavelmente, seja um gametângio modificado, resultado da gametogênese ou meiose 

incompleta (Chang et al. 2003). Estes autores comentam que estas estruturas apresentam 

grande potencial para formar novos talos e funcionam como se fosse um “banco de sementes” 

para a próxima estação. Os propágulos “Brutkorper“ podem ocorrer em qualquer espécie de


Codium (Silva 1957). Sua presença já foi registrada para C. isthmocladum e C. intertextum 

(Silva 1960), C. decorticatum (Williams 1980) e C. edule (Chang et al. 2003). 

Codium repens P. Crouan & H. Crouan in Vickers. Figs: 26-33 

Annales des Scienses Naturelles, Botanique, ser. 9: 56, 1905. 

Localidade tipo: I. Guadeloupe, Índias Occidentais. 

Talo procumbente de coloração verde-escuro, com ramificação dicotômica irregular a 

divaricata. Ramos cilíndricos a subcilíndricos, ligeiramente achatados, com diversas 

anastomoses; formando tufos densamente emaranhados, semelhantes a novelos de lã, fixos ao 

substrato por diversos tufos rizoidais. Filamentos medulares incolores medindo 25 (31) 40 μm 

de diâmetro, com espessamento lenticular de 25 (28) 30 μm. Utrículos individuais, clavados, 

subcilíndricos, medindo 120 (157) 280 μm de diâmetro e 500 (1.160) 1360 μm de 

comprimento. Ápices dos utrículos arredondados a ligeiramente subtruncados, parede apical 

delgada até 10 μm de espessura. Pêlos ou cicatrizes de pêlos de 2 a 4 por utrículos, distando 

70 (220) 390 μm abaixo do ápice do utrículo. Gametângios crescendo sobre curto pedicelo, 

distribuídos de 1 a 2 por utrículo, cilíndricos a fusiformes, medindo 60 (68) 130 μm de 

diâmetro e 210 (238) 330 μm de comprimento, distando 290 (303) 340 μm do ápice do 

utrículo. 

Material examinado: Pernambuco: PEUFR 12760: 27/02/2007 - M.C. Accioly; Ilha de Santo 

Aleixo: PEUFR 48574: 31/01/2006 - S.M.B. Pereira et al.(*). PEUFR 48573: 25/05/2005 - 

S.M.B. Pereira et al.(*). Bahia: HUEFS 76947: 04/12/2002 - A.M.Alves et al.; SPF 025952: 

28/11/1981 - Y. Ugadim. Espírito Santo: SP 364920: 09/03/2004 - D. Barata; SP 364829: 

15/04/2003 - D. Barata. 

Comentários: Na Região Nordeste os exemplares foram coletados nas formações recifais 

(BA) ou como material arribado (PE). Nas exsicatas examinadas, os espécimes constavam 

como material arribado. Os exemplares coletados abrigavam como epífitas Phyllodictyon 

anastomosans, Bryopsis pennata, Cladophora dalmatica Kutz. e Ceramium sp. Alguns 

cresciam asssociados com Dictyopteris delicatula, Dictyota cervicornis Kutz. e Caulerpa 

microphysa (Weber van Bosse) Feldmann. 

Os exemplares tombados no Herbário – (SP) provenientes do Sudeste (Espírito Santo) 

apresentaram talos robustos e espessos (acima de 0,5 cm de diâmetro), ramificação 

dicotômica irregular a divaricada, portando poucas anastomoses, distribuídas nas porções


medianas e apicais do talo. Os exemplares coletados no Nordeste (Pernambuco e Bahia) 

apresentaram talos com ramos delgados (0,3 a 0,5 cm de diâmetro), densamente emaranhados, 

semelhantes a novelos de lã, portando diversas anastomoses, freqüentemente distribuídas na 

região mediana. 

A nítida diferença encontrada na espessura dos ramos nos exemplares do Nordeste e o aspecto 

emaranhado semelhante a novelo, foram duas características semelhantes a descritas para C. 

edule P. C. Silva. No entanto, C. edule é uma espécie que ocorre na região Indo-Pacífica, 

tendo sido registrada para o Hawai, Filipinas e Taiwan (Oceano Pacífico) e Maldivas (Oceano 

Índico). C. repens e C. edule fazem parte do “complexo Codium geppiorum”, que é formado 

por representantes de talos rastejantes, procumbentes e anastomosados, encontrados 

principalmente na região Indo-Pacífica. C. edule é taxonomicamente muito próxima de C. 

repens do Atlântico (Silva 1960, Jones & Kraft 1984, Chang et al. 2002). 

Possivelmente, as variações de talos encontradas na espécie estejam relacionadas às condições 

ambientais. Segundo Alves & Moura (2005), os exemplares coletados na Bahia foram 

encontrados desenvolvendo-se na região entre-marés, crescendo nas bordas dos recifes, em 

local protegido da arrebentação e da luz solar. Os exemplares do Espírito Santo, 

provavelmente sejam da região de infralitoral, pois foram encontrados como arribados. Silva 

(1960), num trabalho sobre os Codium no Atlântico Tropical registrou a ocorrência de 

exemplares de C. repens com talos robustos (acima de 0,5 cm diâmetro) para o Brasil, 

dragados a 55 m de profundidade. Van den Heede & Coppejans (1996) também relatam a 

variação de ambos os talos para os representantes do Quênia, Tanzânia e Ilhas Seychelles. 

Os exemplares analisados correspondem ao que foi descrito por Joly (1965), Silva (1960) e 

Taylor (1960) para o Atlântico tropical, Van Den Heede & Coppejans (1996) para o Quênia, 

Tanzânia e Ilhas Seychelles e Littler & Littler (2000) para a região dos mares do Caribe. 

Codium spongiosum Harvey. Figs: 34-40. 

Transactions of the Royal Irish Academy 22 (Science): 565.1855. 

Localidade tipo: King George’s Sound, Oeste da Austrália 

Talo pulvinado, subgloboso, de coloração verde-clara, hábito prostrado, formando almofadas 

de contornos irregulares, frouxamente aderidas ao substrato por vários tufos rizoidais de 

fixação. Filamentos medulares incolores medindo 60 (72) 80μm de diâmetro com 

espessamento lenticular de 23 (38) 57 μm. Utrículos frouxamente agrupados, de fácil 

dissociação, clavados a cilíndricos medindo 150 (290) 490 μm de diâmetro e 1.244 (1.565) 

3.582 μm de comprimento. Ápice do utrículo arredondado, subtruncado, parede delgada com


3.8 (5) 7.5 μm de espessura. Pêlos ou cicatrizes de pêlos abundantes, formando faixas, 

distando 175 (295) 514 μm abaixo do ápice do utrículo. Gametângios crescendo sobre curto 

pedicelo, distribuídos de 1 a vários por utrículo, ovóides, lanceovóides a fusiformes, medindo 

87 (90) 117 μm de diâmetro e 209 (280) 310 μm de comprimento, distando 400 (435) 565 μm 

do ápice do utrículo. 

Material examinado: Espírito Santo: PEUFR 48543: 27/02/2006 - D. Barata (*); SPF 54244: 

20/01/1973 - E. C. Oliveira Filho & L. Behar; SPF 580: 4/06/1950 - W. Bernard, 

profundidade (22 m); RFA 32360: 30/05/1983 - G.J.P. Mitchell. Rio de Janeiro: PEUFR 

48542: 27/07/2006 - M.F. Oliveira-Carvalho, D. Barata & V. Cassano (*); PEUFR 48541: 

11/08/2006 - V. Cassano (*); HRJ 008021: 11/04/1992 - A.G. Pedrini; SPF 9967: 28/08/1981 

- E. Oliveira Filho, Y. Yoneshigue & M. Figueiredo; RB 292827: 01/07/1979 - Y. 

Yoneshigue. 

Comentários: C. spongiosum é uma espécie amplamente distribuída em águas temperadas e 

tropicais e seu centro de dispersão é a região Indo–Pacífica (Silva 1952; 1959; Jones & Kraft 

1984). No litoral brasileiro, os espécimes foram coletados na região entre-marés, nos costões 

rochosos da Região Sudeste (Rio de Janeiro e do Espírito Santo), em local moderadamente 

protegido. No Rio de Janeiro (Praia do Forno - Búzios), C. spongiosum formava extensas 

populações. Há registro desta espécie ocorrendo também no infralitoral do litoral do Espírito 

Santo a 22 m de profundidade (SPF 580). 

Dentre os exemplares coletados alguns abrigavam como epífitas Ulva flexuosa Wulfen, 

Cladophora montagneana Kütz., Asteronema breviarticulatum (J. Agardh) L. C. Ouriques & 

Z. L. Bouzon, Herposiphonia secunda, Ceramium brevizonatum, Ulva sp. e Polysiphonia sp. 

Alguns cresciam associados com Jania capillacea Harv. e Ulva fasciata Delile. 

Morfologicamente, os exemplares analisados formavam agregados de plantas, com aspectos 

subglobóides a irregulares, típicos de águas rasas, corroborando com Jones & Kraft (1984). 

Os referidos autores ao analisarem populações de C. spongiosum para Ilhas Lord Howe 

(Austrália), observaram que os exemplares provenientes de águas profundas tendem a crescer 

isoladamente, adquirindo formas esféricas, enquanto que os de águas rasas formam agregados 

irregulares, cobrindo grandes extensões dos recifes. De modo geral, as plantas analisadas de 

C. spongiosum correspondem ao que foi descrito e ilustrado por Silva (1960) para o Atlântico 

Tropical e para a Austrália (Jones & Kraft 1984).


Codium taylorii P. C. Silva Figs: 41-47 

Nova Hedwigia, 1: 510, 1960. 

Localidade tipo: Praia de Pass-a-Grille, Pinellas, Florida, E.U.A 

Talo ereto, coloração verde-escura, com até 10 cm de altura, fixo ao substrato por um 

apressório basal discóide. Ramificação dicotômica irregular, dicotomias de última ordem com 

crescimento desigual a cervicornes Ramos frequentemente achatados, ramificados até a 10 a 

ordem. Filamentos medulares com 15 (25) 40 μm de diâmetro, com espessamento lenticular 

15 (30) 40 μm. Utrículos individuais, clavados, cilíndricos, piriformes, 80 (170) 377 μm de 

diâmetro e 370 (882) 1.508 μm de comprimento. Ápices dos utrículos ligeiramente 

arredondados a subtruncados, parede apical até 30 μm de espessura. Pêlos ou cicatrizes de 

pêlos distando 50 (71) 100 μm do ápice do utrículo. Gametângios 2 a 3 distribuídos por 

utrículo, crescendo sobre curto pedicelo, ovóides a fusiformes, medindo 50 (68) 110 μm de 

diâmetro e 180 (270) 300 μm de comprimento, distando 210 (312) 380 μm do ápice do 

utrículo. 

Material examinado: Ceará: PEUFR 17814: 07/09/1991 - N.P. Dantas. Pernambuco: PEUFR 

48507: 11/01/2005 - M.F. Oliveira-Carvalho & S.M.B. Pereira (*). Alagoas: SPF 93: 

31/01/1965 - E.C. Oliveira Filho. Bahia: PEUFR 48514: 17/04/2005 - M.F. Oliveira-Carvalho 

& M.C. Accioly (*). Espírito Santo: PEUFR 48516: 20/08/2005 - D. Barata (*). Rio de 

Janeiro: PEUFR 48523: 28/07/2006 - D. Barata (*). São Paulo: PEUFR 48522: 14/07/2006 - 

M.F. Oliveira-Carvalho & F. Berchez (*). Paraná: SPF 005149: 24/12/1973 - O. Guimarães. 

Santa Catarina: PEUFR 48506: 01/04/2006 - M. F. Oliveira-Carvalho et al.(*). Arquipélago 

de Fernando de Noronha: SPF 51490: 27/10/1985 - E.C. Oliveira & V. Eston. 

Comentários: Os espécimes foram coletados na zona entre-marés, sobre os recifes da Região 

Nordeste (Pernambuco e Bahia) e nos costões rochosos das Regiões Sudeste (Rio de Janeiro, 

São Paulo e Espírito Santo) e Sul (Santa Catarina). No litoral de São Paulo, alguns exemplares 

jovens foram encontrados associados com C. intertextum na zona de arrebentação. Sobre o 

talo de alguns exemplares coletados, observou-se a presença de Anadyomene stellata, 

Bryopsis pennata, Dictyopteris delicatula, Ceramium brevizonatum, Antithamnion sp. e 

Polysiphonia sp. 

Apesar de a olho nu a referida espécie ser facilmente reconhecida, pois apresenta talo com 

dicotomias de ângulos abertos, irregulares, com ramos terminais de crescimento desigual a 

cervicornes, dando um aspecto esférico à planta, alguns exemplares apresentaram ampla


variação morfológica, não sendo possível o seu reconhecimento. Alguns exemplares do litoral 

baiano poderiam ser confudidos no aspecto externo com C. decorticatum. Neste caso, é 

possível que haja na população hibridização intraespecífica, como comentado anteriormente 

para C. decorticatum. Casos de hibridização intraespecífica já foram relatados por Silva 

(1960) para C. decorticatum, C. taylorii e C. isthmocladum. No Rio de Janeiro, os exemplares 

coletados apresentavam talos densamente ramificados, de consistência aveludada devido à 

abundância de pêlos, ápices dilatados ou capitados. Alguns exemplares com ramos 

subcilíndricos e dicotomias levemente achatadas foram encontrados no litoral de Santa 

Catarina. 

C. taylorii é uma espécie amplamente distribuída no Atlântico Tropical (Silva 1960). Sua 

grande variação morfológica tem sido referida por Silva (1960) e Van den Heede & 

Coppejans (1996). Em geral, os exemplares analisados correspondem às descrições e 

ilustrações de Joly (1965), Silva (1960) e Taylor (1960) para o Atlântico Tropical, Van den 

Heede & Coppejans (1996) para o Quênia, Tanzânia e Ilhas Seychelles e Littler & Littler 

(2000) para a região dos mares do Caribe. 

Codium sp. Figs: 48-53. 

Talo ereto, coloração verde-clara, com até 15 cm de altura, fixo ao substrato por um 

apressório basal discóide. Ramificação dicotômica a irregular, raramente prolífera nas porções 

medianas do talo. Ramos subcilíndricos ou, às vezes, aplanados em algumas partes da região 

mediana do talo, ramificados até a 6 a ordem, medindo de 1,5 - 3 mm diâmetro. Filamentos 

medulares incolores, 20 (34) 48 μm de diâmetro, com espessamento lenticular de 20 (27) 35 

μm. Utrículos individuais, subcilíndricos a raramente piriformes, com 100 (208) 340 μm de 

diâmetro e 470 (586) 740 μm de comprimento. Ápice do utrículo arredondado a truncado, 

parede apical delgada, medindo até 5 μm de espessura. Pêlos ou cicatrizes de pêlos, distando 

57 (82) 115 μm abaixo do ápice do utrículo. Gametângios 1 a 2 por utrículo, cilíndricos a 

ovóides, 50 (72) 100 μm de diâmetro e 100 (159) 200 μm de comprimento, distando 250 

(276) 310 μm do ápice do utrículo. 

Material examinado: Rio de Janeiro: UC1607939: 13/04/1994 - COSTA VERDE II, 22 0 32’S, 

40 0 57’W, profundidade (66 m); UC 1607940: 15/05/1993 - PITA II, Programa Integrado de 

Treinamento de Alunos II, 22 0 19’30”– 22 0 02’30”S; 40 0 51’40 ” – 40 0 52 ’ 30 ” W, Profundidade 

(53 m).


Comentários: O material analisado neste estudo foi classificado como C. profundum Silva & 

Chacana, espécie registrada uma única vez para a costa brasileira (Chacana et al. 2003). Estes 

autores estabeleceram a referida espécie com base no material coletado nas Ilhas Canárias e 

exsicatas depositadas no Herbário UC, provenientes dos herbários UC, CJD, L, SPF (Brasil). 

Os exemplares analisados pelos autores foram coletados na região de infralitoral nas seguintes 

localidades: Bermudas (55 m), Flórida (60 m), Golfo do México (58 m) e no Brasil (66 m) 

crescendo sobre nódulos de algas calcárias. 

C. profundum foi a única espécie não coletada neste trabalho, pois tudo indica ser 

característica de grandes profundidades. Portanto, a descrição e ilustrações apresentadas 

foram baseadas na análise das exsicatas enviadas por empréstimo pelo curador P. C. Silva, do 

Herbário da Universidade da Califórnia, Berkeley - (UC). Nestes exemplares, não foi 

verificada ocorrência de epífitas. 

Morfologicamente, C. profundum assemelha-se a C. isthmocladum, por esta razão fazendo 

com que P. C. Silva o identificasse como C. isthmocladum subsp. clavatum (Collins & 

Hervey) P. C. Silva. Posteriormente, ao re-analisar este material, Silva propôs o 

estabelecimento de C. isthmocladum subsp. clavatum “nome nudum”. Chacana et al. 

examinando este material propuseram o estabelecimento de C. profundum Silva & Chacana 

(Chacana et al. 2003). Conforme as Normas Internacionais de Nomenclatura Botânica, este 

táxon é considerado inválido por carecer de uma diagnose em latim na sua descrição original. 

Neste trabalho, de acordo com o código, não esta sendo reconhecida a referida espécie. 

Apesar da aparente semelhança com C. isthmocladum, observou-se que Codium sp. 

diferencia-se em alguns aspectos morfo-anatômicos, pois possui ramificação dicotômica a 

irregular, ramos subcilíndricos e utrículos subcilíndricos a piriformes, com ápice não 

espessado, enquanto que C. isthmocladum apresenta ramificação dicotômica regular, com 

ramos cilíndricos e os utrículos são clavados, cilíndricos a raramente piriformes, com ápices 

espessados. 

Aspectos taxonômicos e de distribuição do gênero Codium no Brasil 

Os espécimes de Codium, a nível genérico são facilmente reconhecidos, devido ao 

característico padrão de construção cenocítico e aparência esponjosa. O mesmo não pode ser 

estendido à delimitação de algumas espécies, pois o reconhecimento é difícil. Algumas 

espécies apresentam ocorrências restritas, resultando em pouca variabilidade morfológica, 

enquanto outras apresentam uma distribuição mais ampla e padrão de plasticidade 

morfológica complexa (Pedroche 2001). 

A combinação dos caracteres morfo-anatômicos como o hábito, o tipo de ramificação, o


tamanho e forma dos utrículos são importantes atributos que permitem uma relativa facilidade 

na distinção específica, sendo que os utriculares e reprodutivos são as melhores ferramentas, 

principalmente para aquelas espécies com intricada variação morfológica (Pedroche et al. 

2002). Devido ao fato de possuírem formas e tamanhos constantes, os utrículos são 

considerados por Silva (1955, 1960) como um dos principais critérios taxonômicos 

interespecíficos. 

Com base nos caracteres morfo-anatômicos, foram identificados sete táxons infragenéricos 

para a costa brasileira (Tab.1). Os caracteres morfo-anatômicos de maior peso na 

identificação foram: morfologia do talo, tipos de ramificação, os utrículos e os gametângios. 

Dentre estes, os utrículos realmente se constituíram em peça chave na identificação entre 

espécies, corroborando com Silva (1955, 1960) e Pedroche et al. (2002). 

A junção destes caracteres foi fundamental para a distinção interespecífica. Os representantes 

do subgênero Shizocodium como C. isthmocladum, C. taylori e C. decorticatum foram os que 

exibiram maior plasticidade morfológica e, em conseqüência foram os que apresentaram 

maiores dificuldades na identificação específica, concordando com o que foi observado por 

Silva (1960). O contrário foi observado nas espécies de hábito prostrado pertencentes ao 

subgênero Tylecodium. Estas foram facilmente identificadas, pois possuem caracteres morfoanatômicos 

bem definidos e a pouquíssima variação morfológica foram observadas como 

comentadas anteriormente em cada espécie. Apesar da ampla variação morfológica 

apresentada por alguns espécimes na costa brasileira, os caracteres morfo-anatômicos 

adotados na taxonomia do gênero mostraram-se bastante eficientes. 

Na costa brasileira, os representantes do gênero Codium não se distribuem uniformente (Tab. 

2). Na Região Sudeste, o maior número ocorreu nos Estados do Espírito Santo e do Rio de 

Janeiro, enquanto na Região Nordeste nos estados de Pernambuco e da Bahia. Uma menor 

diversidade específica do gênero foi verificada para a Região Sul, devido, provavelmente, a 

redução de substrato consolidado, importante na fixação das algas. Nesta região, a ampla 

presença de substrato rochoso existente em parte do litoral de Santa Catarina é gradualmente 

substituída pelas extensas e lineares praias arenosas do Rio Grande do Sul (Horta et al. 2001). 

Com relação à Região Norte da costa brasileira, até o presente momento nenhum registro de 

Codium foi feito. Esta é uma região de difícil acesso e consequentemente pouco coletada. 

Aliado a isto, nesta região ocorre diversos enclaves de manguezais, caracterizadas por 

manchas com baixa salinidade e alta turbidez, devido ao aporte de numerosos rios (Horta et 

al. 2001). 

As espécies com hábito ereto apresentaram uma maior distribuição na costa brasileira, 

destacando-se C. isthmocladum (12 Estados), C. decorticatum (11 Estados) e C. taylorii (10


Estados). Dentre as espécies de hábito prostrado, C. intertextum apresentou maior distribuição 

(7 estados). C. spongiosum esteve presente apenas nos Estados do Espírito Santo e Rio de 

Janeiro (Tab. 2). Provavelmente a ocorrência desta espécie na costa brasileira, está 

relacionada com a Corrente de Benguela que alcança o norte do Estado do Espírito Santo, 

originando a Corrente do Brasil e esta corrente se constitui em um potencial veículo de 

dispersão de representantes oriundos das floras Indo-Pacífica e Sul-africana (Horta et al. 

2001). 

Algumas espécies tiveram sua distribuição fitogeográfica ampliada, principalmente para a 

Região Nordeste, como C. decorticatum para os Estados do Ceará, Paraíba e Alagoas; C. 

intertextum para o Estado de Alagoas; C. isthmocladum para os Estados de Alagoas, Sergipe e 

Paraná e C. taylorii para os Estados do Ceará, Paraíba, Alagoas e Paraná. 

Com relação aos ambientes insulares, pouquíssimos exemplares de Codium foram 

encontrados nos herbários consultados. Neste caso, só foi possível analisar os exemplares 

provenientes do Arquipélago de Fernando de Noronha (resultando em 3 espécies) e para o 

Atol das Rocas, com uma espécie (Tab. 2). Entretanto, Villaça et al. (2006) fizeram registro 

de C. decorticatum para o Arquipélago de Trindade, mas nenhuma exsicata referente a esta 

citação foi localizada nos herbários consultados. 

Com base nas publicações de Joly (1957; 1965), Pereira et al. (2002), Alves & Moura (2005), 

Chacana et al. (2003) e Pereira et al. (2007), oito espécies foram citadas para a flora brasileira: 

C. decorticatum, C. intertextum, C. isthmocladum, C. profundum, C. repens, C. spongiosum, 

C. taylorii e C. tomentosum. Neste estudo, com exceção de C. tomentosum e C. profundum , a 

ocorrência das demais espécies foram confirmadas. Registro da ocorrência de C. tomentosum 

na costa brasileira foi feito por Pedrini et al. (1992), Pereira et al. (2002) e Villaça et al. 

(2006) para o Arquipélago de Fernando de Noronha e por Moebius (1890) para o litoral do 

Rio de Janeiro. Ressalva-se que os registros desta espécie feitos por Pereira et al. (2002) e 

Villaça et al. (2006) foram baseados em dados da literatura. Salienta-se que nos herbários 

analisados, não foi observada nenhuma exsicata da referida espécie, assim como não foi 

recoletado nenhum material na costa brasileira. Pelos fatos analisados, considera-se como 

duvidosa a ocorrência de C. tomentosum para a costa brasileira. Segundo Silva (1960; 1962), 

C. tomentosum foi uma espécie erroneamente designada para os Codium dicotômicos, pois 

cerca de 30 espécies citadas para o Atlântico Ocidental foram designadas como C. 

tomentosum, quando na realidade correspondiam a C. isthmocladum, C. taylorii, C. repens e 

C. decorticatum. Segundo o Código Internacional de Nomenclatura Botânica (artigo 36), o 

nome de um novo táxon é considerado validamente publicado, se acompanhado de uma 

descrição ou diagnose em latim (Bicudo & Prado 2003). Por este motivo C. profundum está


sendo citado neste trabalho como Codium sp. 

Em termos gerais, verifica-se que há uma baixa diversidade de espécies de Codium no litoral 

brasileiro. Silva (1960) também relatou a notável pobreza no número de espécies para o 

Oceano Atlântico, e que esta relativa pobreza de espécies está mais relacionada aos fatores 

históricos (deriva continental) do que aos fatores hidrológicos. Ainda de acordo com o 

referido autor, nas áreas onde há marcante variação de temperatura, aliado a outros aspectos, a 

flora de Codium se mantém rica, enquanto nas áreas onde a temperatura é uniforme, 

desenvolvem-se poucas espécies. Littler & Littler (2000) também encontraram uma baixa 

diversidade para a Região do Caribe, registrando apenas 6 espécies (C. intertextum, C. ovale 

Zanardini, C. repens, C. carolinianum Searles, C. decorticatum e C. taylorii). Na flora 

tropical e subtropical do Atlântico Ocidental o referido gênero está representado por 11 táxons 

infragenéricos (Wynne 2005). 

Agradecimentos 

Os autores agradecem á Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior 

(CAPES) pela Bolsa de Doutorado concedida à primeira autora. Pelo suporte financeiro 

concedido pela Fundação de Amparo à Ciência e Tecnologia do Estado de Pernambuco 

(FACEPE), através do Processo 008-05.03/04 e pelo Conselho Nacional de Desenvolvimento 

Científico e Tecnológico (CNPq), através do Processo 477354/04-1. Ao Curador do Herbário 

de Berkeley – UC, Dr. Paul C. Silva e ao Dr. Max Chacana pelo envio das exsicatas de C. 

profundum. 

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ANEXOS DO MANUSCRITO I

TABELAS

Tabela 1- Principais caracteres morfo-anatômicos utilizados como parâmetros na identificação de Codium Stackhouse que ocorrem no litoral brasileiro. 

Caracteres morfo-anatômicos baseados nos trabalhos de Silva (1951;1959), Silva & Womersley (1956); Van den Heede & Coppejans (1996) e 

Pedroche et al. (2002). 

Morfológicos 

Anatômicos 

Reprodutivos 

Caracteres 

Subgênero Shizocodium Subgênero Tylecodium 

Morfo-anatômicos C. decorticatum C. isthmocladum Codium sp C. taylorii C. repens C. intertextum C. spongiosum 

Hábitto Ereto Ereto Ereto Ereto Procumbente Prostrado Prostrado 

Forma dos ramos 

Tipo de ramificação 

Predominantemente 

cilíndrico, exceto nas 

dicotomias 

Dicotômica regular, 

politômica 

Cilíndrico Subcilíndrico 

Dicotômica regular Dicotômica irregular 

Freqüentemente 

achatado 

Dicotômica irregular, 

cervicornes 

Cilíndricos, 

subcilíndricos 

Dicotômica irregular, 

divaricata 

Crosta expandida 

irregulamente 

Pulvinado, 

Subgloboso 

ausente ausente 

Diâmetro do filamento 

medular 

Inserção dos pêlos ou 

40 (55) 70 µm 24 (30) 36 µm 20 (34) 48 µm 15 (25) 40 µm 25 (31) 40 µm 21 (29) 35 µm 60 (72) 80 µm 

cicatrizes em relação ao 

ápice do utrículo 

80 (115) 232 μm 48 (68) 91 μm 57 (82) 115 µm 50 (71) 100 µm 70 (220) 390 µm 66 (97) 162 μm 400 (435) 565 µm 

Morfologia do utrículo 

Clavado, cilíndrico, 

piriforme 


piriforme 

Subcilíndrico, 

piriforme 


piriforme 

Clavado, 

subcilíndrico 

Clavado, cilíndrico Clavado, cilíndrico 

Comprimento do utrículo 870 (1.132) 2.125 μm 468 (623) 736 μm 470 (586) 740 µm 370 (882) 1.508 µm 500 (1.160) 1.360 µm 469 (686) 914 μm 

1.244 (1.565) 3.582 

µm 

Diâmetro do utrículo 90 (340) 550 μm 114 (193) 278 μm 100 (208) 340 µm 80 (170) 377 µm 120 (157) 280 µm 58 (103) 202 μm 150 (290) 490 µm 

Ápice do utrículo 

Arredondado, 

truncado 


truncado, espessado e 

lamelado. 




subtruncado 







Morfologia dos 

Gametângios 

Ovóide, lanceovóide, 

lanceolado 


fusiforme 

Ovóide, cilíndrico, Ovóide, fusiforme Cilíndrico, fusiforme Cilíndrico, fusiforme 


fusiforme 

Comprimento do 

gametângio 


Diâmetro do gametângio 

Inserção do gametângio 


em relação ao ápice do 

utrículo 

210 (468) 669 μm 198 (237) 297 μm 250 (276) 310 µm 210 (312) 380 µm 

290 (303) 340 µm 

277 (323) 392μm 400 (435) 565 µm

Tabela 2 – Distribuição dos representantes de Codium Stackhouse na costa brasileira, com base em material coletado e exsicatas depositadas nos 

herbários (JPB,PEUFR,ALVB,HUEFS,RJ,RB,R, HB, RFA,SP,SPF,FLOR) do Brasil e de Berkeley (UC). 

Espécies 

C. decorticatum 


C. isthmocladum 

C. repens 

C. spongiosum 

C. taylorii 

Codium sp (= C. 

profudum) 

Piauí (PI) 

Ceará (CE) 

Rio Grande do 

Norte (RN) 

Região 

Nordeste 

Paraíba (PB) 

Pernambuco 

(PE) 

Alagoas (AL) 

Sergipe (SE) 

Bahia (BA) 

Espírito Santo 

(ES) 

Região 

Sudeste 

Rio de Janeiro 

(RJ) 

São Paulo (SP) 

Paraná (PR) 

Região 

Sul 

Santa Catarina 

(SC) 

Rio Grande do 

Sul (RS) 

Ambientes 

insulares 

Fernando de 

Noronha (FN) 

Atol das Rocas 

(AR) 

Almirante 

Saldanha 

Expedições 

Oceanográficas 

0 1 0 1,2 1,2 1 0 1,2 1,2 1,2 1,2 1,2 1,2 1 0 0 0 2 0 2 

0 0 0 0 1 1 0 1 1 1,2 1 0 1 0 1,2 1 0 2 0 0 

1 1,2 1,2 1,2 1,2 1 2 1,2 1,2 1,2 2 1 1 0 1 0 2 2 2 2 

0 0 0 0 1 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 

0 0 0 0 0 0 0 0 1,2 1,2 0 0 0 0 0 0 2 0 0 0 

0 1 0 1 1,2 1,2 0 1,2 1,2 1,2 1 1 1,2 0 1 0 0 0 0 0 

0 0 0 0 0 0 0 0 0 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 

Total de espécies 1 3 1 3 5 4 1 5 6 6 4 3 4 1 3 1 2 3 1 2 

Legenda: 0 = não encontrado; 1= Região entre-marés; 2= Região infralitoral. 

Akaroa 

Canopus 

Comissão 

Recife

FIGURAS

Legenda das figuras 

Figs. 1-8. Codium decorticatum (Woodw.) M. Howe. Fig. 1. Aspecto geral da planta 

crescendo sobre costão rochoso. Barra da escala = 3 cm. Figs. 2-3. Talos ramificados, 

com dicotomias curtas, coletados em águas agitadas no mesolitoral. Barra da escala = 1 

cm e 2 cm, respectivamente. Fig. 4. Talo com morfologia típica. Note dicotomias 

cuneadas e internós espaçados. Barra da escala = 3 cm. Fig. 5. Planta do infralitoral. 

Observe talo predominantemente subcilíndrico com dicotomias espaçadas. Barra da 

escala = 5 cm. Fig. 6. Utrículo reprodutivo, portando gametângio (gt). Barra da escala = 

500 µm. Fig. 7. Parte do utrículo portando diferentes tipos de gametângios. Barra da 

escala = 500 µm. Fig. 8. Detalhe de parte do utrículo com gametângio (gt) ovóide. Note 

opérculo (op). Barra da escala = 100 µm. 

Figs. 9-15. Codiun intertextum F. S. Collins & Harvey. Fig. 9. Planta com talo de 

aspecto enrugado, coletada em zona de forte arrebentação. Barra da escala = 3 cm. Fig. 

10. Planta com talo pouco enrugado, coletada em ambiente de pouca arrebentação. 

Barra da escala = 1 cm. Fig. 11. Utrículos fortemente agrupados. Barra da escala = 300 

µm. Fig. 12. Detalhe dos utrículos. Barra da escala = 300 µm. Fig. 13. Detalhe do 

utrículo reprodutivo, evidenciando gametângio cilíndrico (gt). Barra da escala = 50 µm. 

Fig. 14. Detalhe do utrículo com gametângio fusiforme (gt). Note opérculo (op) e 

cicatrizes de pêlos (cp). Barra da escala = 100 µm. Fig. 15. Detalhe da porção superior 

do utrículo, evidenciando constrição abaixo do ápice (seta tracejada) e cicatrizes dos 

pêlos dispostas em faixas (cp). Barra da escala = 100 µm. 

Figs 16-25. Codium isthmocladum Vickers. Fig. 16. Planta com hábito arbustivo, com 

dicotomias espaçadas, encontradas em poças recifais, em locais protegidos. Barra da 

escala = 2 cm. Fig. 17. Planta com hábito arbustivo, dicotomias curtas, crescendo na 

zona entre-marés em locais batidos. Barra da escala = 1 cm. Fig. 18. Planta com hábito 

arbustivo coletada sobre costão rochoso em local batido. Barra da escala = 2 cm. Fig. 

19. Planta com hábito arbustivo, densamente ramificado, ocorrendo na região de 

infralitoral sobre nódulos de algas calcárias. Barra da escala = 2 cm. Figs. 20-21. 

Diferentes tipos de utrículos. Note presença de cicatrizes de pêlos (cp) e de gametângios 

(cg). Barra da escala = 100 µm e 200 µm, respectivamente. Fig. 22. Detalhe do ápice do

utrículo. Observe ápice espessado e lamelado (seta tracejada). Barra da escala = 50 µm. 

Fig. 23. Detalhe do utrículo, portando gametângio (gt) ovóide. Barra da escala = 50 µm. 

Fig. 24. Detalhe do utrículo com gametângio fusiforme (gt). Barra da escala: 50 µm. 

Fig. 25. Utrículo portando gametângio abortivo (ga). Barra da escala = 300 µm. 

Figs. 26-33. Codium repens P. Crouan & H. Crouan in Vickers. Fig. 26. Aspecto geral 

da planta recém coletada na região entre-marés. Barra da escala = 3 cm. Fig. 27. 

Aspecto geral do talo após fixação. Observe ramificação subdicotômica e anastomoses 

(seta tracejada) restritas a porção mediana. Barra da escala = 2 cm. Fig. 28. Aspecto 

geral de um exemplar de talo robusto e espesso, provavelmente proveniente da região 

do infralitoral. Barra da escala = 3 cm. Figs. 29-30. Utrículos reprodutivos: 

subcilíndrico (Barra da escala = 200 µm) e clavado (Barra da escala = 300 µm), 

respectivamente. Fig. 31. Detalhe de parte do utrículo, evidenciando gametângio 

cilíndrico (gt) e opérculo (op). Barra da escala = 50 µm. Figs. 32-33. Detalhe da porção 

superior do utrículo com cicatrizes de pêlos (cp). Barra da escala = 50 µm, 

respectivamente. 

Figs 34-40. Codium spongiosum Harvey. Fig. 34. Hábito geral da planta formando 

aglomerados sobre o substrato rochoso. Barra da escala = 3 cm. Fig. 35. Talo de aspecto 

subgloboso. Barra da escala = 3 cm. Fig. 36. Aspecto geral dos utrículos frouxamente 

agrupados. Barra da escala = 0,5 cm. Fig. 37. Detalhe de parte dos utrículos 

reprodutivos com gametângios (gt). Observe cicatrizes de pêlos (cp) em faixas abaixo 

do ápice do utrículo. Barra da escala = 200 µm. Figs. 38-40. Detalhe de parte dos 

utrículos reprodutivos evidenciando gametângios ovóides (Barra da escala = 100 µm), 

lanceovóides (Barra da escala = 200 µm) e cilíndricos (Barra da escala = 200 µm), 

respectivamente. Note opérculos (op) dos gametângios. 

Figs. 41-47. Codium taylorii P. C. Silva. Fig. 41. Aspecto de um exemplar coletado na 

região entre-marés. Note talo densamente ramificado. Barra da escala = 1 cm. Fig. 42. 

Aspecto de um exemplar coletado em costão rochoso (região entre-marés). Observe talo 

subcilíndrico. Barra da escala = 2 cm. Figs. 43-44. Aspecto de exemplares coletados nos 

costões rochosos próximos a arrebentação. Observe ramos achatados, com ramificações

terminais cervicornes. Barra da escala = 1 cm, respectivamente. Fig. 45. Utrículo 

clavado com ápice arredondado. Barra da escala = 200 µm. Fig. 46 Utrículos com 

gametângio (gt) cilíndrico. Barra da escala = 100 µm. Note cicatrizes de pelos (cp) 

abaixo do ápice do utrículo. Fig. 47. Utrículo evidenciando pêlo capitado (pc). Barra da 

escala = 200 µm. 

Figs 48-53. Codium sp. Fig. 48. Aspecto geral da planta. Barra da escala = 3 cm. Figs 

49-50. Utrículos subcilíndricos. Observe diferentes tipos de ápice, truncado (Barra da 

escala = 500 µm) e arredondado (Barra da escala = 300 µm), respectivamente. Fig. 51. 

Detalhe de parte do utrículo, evidenciando a cicatriz do gametângio (cg). Barra da 

escala = 300 µm. Figs. 52–53. Parte dos utrículos, portando gametângios (gt) ovóides 

(Barra da escala = 200 µm) e cilíndricos (Barra da escala = 200 µm), respectivamente.


4. RESULTADOS 

4.2. Manuscrito II: 

Análises filogenéticas das espécies brasileiras do gênero Codium 

Stackhouse (Bryopsidales - Chlorophyta) baseadas nas seqüências do 

éxon 1 do gene rbcL. 

O trabalho será enviado para o JOURNAL OF PHYCOLOGY


Análises filogenéticas das espécies brasileiras do gênero Codium 

Stackhouse (Bryopsidales-Chlorophyta) baseadas nas seqüências do 

éxon 1 do gene rbcL. 

Maria de Fátima de Oliveira-Carvalho 1 

1 - Programa de Pós-Graduação em Botânica (PPGB), Universidade Federal Rural de 

Pernambuco – UFRPE. 

Mariana Cabral de Oliveira 2 

2 - Instituto de Biociências, Universidade de São Paulo. Rua do Matão 321, Travessa 14 

– São Paulo – SP. CEP: 05508-900. 

Sonia Maria Barreto Pereira 3 

3 - Departamento de Biologia, Universidade Federal Rural de Pernambuco. Avenida 

Dom Manoel de Medeiros, s/n – Dois Irmãos – Recife – PE. CEP: 52171-900.


RESUMO 

O gênero Codium está representado por 125 espécies e encontra-se amplamente 

distribuídos nos ambientes marinhos de diversas localidades do globo. Devido a grande 

plasticidade morfológica apresentada pelo gênero, a delimitação taxonômica de alguns 

representantes tem-se tornado bastante difícil. Atualmente, seqüências do primeiro exon 

da grande subunidade RUBISCO (rbcL) têm sido utilizada na delimitação molecular e 

filogenia de espécies. No presente estudo, as seqüências para o éxon 1 do rbcL foram 

obtidas de 24 amostras de seis espécies ocorrentes na costa brasileira como C. 

decorticatum, C. intertextum., C. isthmocladum, C. spongiosum, C. taylorii e C. repens. 

Em todas as amostras sequenciadas, o éxon 1 do gene rbcL apresentou 788 pares de 

base. Das 24 amostras seqüenciadas, dez seqüências únicas foram obtidas, as quais 

foram filogeneticamente analisadas com outras seqüências do GenBank, usando 

diferentes métodos de inferências. As árvores resultantes foram similares, apresentando 

três principais agrupamentos monofiléticos: o agrupamento A, composto por espécies 

de forma prostrada, não ramificadas, e na maioria com utrículos agrupados e pequenos; 

o agrupamento B, na maioria consiste de espécies eretas, ramos cilíndricos com os 

utrículos individuais e grandes; e agrupamento C composto por espécies eretas, ramos 

cilíndricos a levemente achatados, utrículos individuais, com tamanhos intermediários. 

As espécies, brasileiras agruparam com similares de outras localidades geográficas e 

aparecem entre os principais agrupamentos monofiléticos. Estes resultados indicam que 

a colonização do Atlântico sul americano ocorreu muitas vezes possivelmente de 

espécies provenientes do Indo-pacífico. 

Palavras Chave: Chlorophyta, Codiaceae, Codium, filogenia molecular, rbcL


ABSTRACT 

The genus Codium is presented by 125 species and it is widely distributed in the marine 

environments from many localities in the globe. Because of its high morphological 

plasticity, the taxonomical delimitation of some representatives which compound the 

genus has found difficulties. Nowadays sequences of the first exon of the large rubisco 

subunit (rbcL) has been used for molecular species delimitation and phylogeny. In the 

present study, sequences for the rbcL exon 1 were obtained for 24 samples of six 

species occurring on the Brazilian coast as C. decorticatum, C. intertextum, C. 

isthmocladum, C. spongiosum, C. taylorii and C. repens. In all sequenced samples, the 

exon 1 of the gene rbcL showed 788 pairs of base. Of the 24 sequenced samples, ten 

unique sequences were obtained which were phylogenetically analyzed with other 

sequences from the GenBank, using different inference methods. The resulting trees 

were similar, presenting three main monophyletic groupings: A, composed of mat- 

forming, unbranched species mostly with composite and small utricles; B, composed of 

mostly erect, cylindrical branched species with simple and large utricles; and C 

composed of mostly erect, cylindrical to flattened branched species with simple and 

intermediate size utricles. The Brazilian species grouped with similar from other 

geographical localities and are observed among the main monophyletic groupings. 

These results indicate that the colonization of South American Atlantic occurred many 

times possibly with species from the Indo-Pacific. 

Key words: Chlorophyta, Codiaceae, Codium, molecular phylogeny, rbcL


INTRODUÇÃO 

Codium Stackhouse é um gênero cosmopolita, amplamente distribuído nos 

ambientes marinhos de diversas localidades do globo, com exceção para os ambientes 

polares e atualmente engloba 125 espécies. No entanto, a maioria das espécies do 

gênero encontra-se distribuída nas zonas temperadas e subtropicais (Goff et al. 1992, 

Pedroche et al. 2002, Verbruggen et al. 2007). 

O talo é caracterizado pelo aspecto esponjoso, devido ao denso entrelaçamento 

dos filamentos cenocíticos (Graham & Wilcox 2000). Anatomicamente, a região 

medular é constituída por filamentos cilíndricos, incolores, que se alargam para a 

extremidade originando os utrículos, caracterizando a camada cortical (Van den Hoek et 

al. 1995, Pedroche 2001). 

A marcada plasticidade morfológica apresentada dentre e entre populações, tem 

sido relatada por diversos autores como Silva (1951), Chacana et al. (1996), Pedroche et 

al. (2002). Em conseqüência desta plasticidade, a sistemática do gênero é bastante 

complexa e confusa (Chacana et al. 1996, Shimada et al. 2004). 

Na tentativa de elucidar a taxonomia de gêneros problemáticos, com marcada 

plasticidade morfológica e a dificuldade de precisar as causa dessa variação (se são 

ecológicas ou genéticas), há uma tendência de privilegiar o uso de novas tecnologias, 

como o sequenciamento de ácidos nucléicos, microscopia eletrônica, análise de 

cariótipos e análises numéricas de dados para delimitar e reunir táxons em diferentes 

níveis taxonômicos (Rodrigues 1998). 

Nas algas é relativamente comum a plasticidade morfológica e a presença de 

espécies crípticas (Oliveira 2001) e o recente uso de marcadores moleculares tem 

possibilitado avaliar a biodiversidade de modo rápido e eficiente. No momento, o


sequenciamento de DNA é a técnica mais poderosa para detectar polimorfismo no 

genótipo e tem sido bastante utilizada na comparação de diferentes níveis taxonômicos 

(Oliveira 1998). 

Nas macroalgas, os estudos filogenéticos têm-se baseado nas seqüências de 

DNA de diferentes moléculas. Essas regiões são denominadas de marcadores 

moleculares, sendo que a maioria destes estudos estão baseadas na região dos genes 

ribossomais, incluindo as seqüências dos genes que codificam para a subunidade 

pequena (SSU rDNA) e para a subunidade grande (LSU rDNA) do RNA ribossomal 

(rRNA), além dos espaçadores internos transcritos (ITS) entre esses genes. 

Pedroche (2001) analisou fragmentos de 716 pares de base do LSU rDNA do 

genoma mitocondrial para dez táxons de Codium ocorrentes no Pacífico mexicano. As 

tipologias obtidas neste estudo, confirmaram a existência de grupos monofiléticos e que 

o LSU do rDNA mitocondrial é um excelente marcador para propor hipóteses 

filogenéticas neste gênero. 

Outras regiões, como o rbcL também tem sido bastante utilizada. O gene rbcL 

codifica a subunidade grande da enzima ribulose – 1,5 – bifosfato carboxilase 

oxigenase, mais conhecida como RUBISCO (Provan et al. 2004). Este gene encontra-se 

localizado no genoma do cloroplasto dos organismos fotossintetizantes (Manhart & 

VonderHaar 1991, Hanyuda et al. 2000). 

No genoma do cloroplasto, regiões não codificadoras como os introns, tem sido 

reportados em vários genes. Nas Chlorophyta, introns no gene rbcL têm sido relatados 

para alguns gêneros da classe Ulvophyceae, como Bryopsis maxima Okamura (Kono et 

al. 1991), Codium fragile (Suringar) Hariot (Manhart & Vonderhaar 1991) e no gênero 

Caulerpa J. V. Lamouroux (Hanyuda et al. 2000). As inferições filogenéticas no gênero


Codium em sua maioria está baseada no éxon 1 gene rbcL. Este tem sido amplamente 

utilizado para análises filogenéticas em organismos fotossintetizantes por se tratar de 

um gene com seqüência muito estável, onde o exon 1 possui aproximadamente o mesmo 

tamanho em todas as plantas verdes, com exceção para as angiospermas (Hanyuda et al. 

2000). 

Relativamente, ainda são poucos os estudos que enfocam seqüências de 

nucleotídeos do gene rbcL para o gênero Codium. Alguns trabalhos enfocaram a espécie 

invasiva Codium fragile (Goff et al. 1992, Manhart et al. 1989, Francis et al. 1987). 

Inferições filogenéticas baseando-se no exon 1 do rbcL foram realizadas por Shimada et 

al. (2004) ao analisarem cerca de 613 pares de base do referido gene para 18 espécies de 

Codium no Japão. Recentemente Verbruggen et al. (2007) fizeram uma ampla análise, 

incluindo 74 táxons de Codium de diversas localidades, baseando-se em 227 seqüências 

do exon 1 do gene rbcL para propor relações filogenéticas e fitogeográficas dentro do 

gênero. 

No Brasil, sete táxons foram descritos para o gênero: C. decorticatum (Woodw.) 

M. Howe, C. intertextum Collins & Herv., C. isthmocladum Vickers, C. profundum 

Silva & Chacana, C. repens P. Crouan ex Vickers, C. spongiosum Harv. e C. taylorii P. 

C. Silva, distribuídos desde o litoral do Piauí ao litoral do Rio Grande do Sul. No 

entanto, o conhecimento da flora de Codium para o Brasil, está restrito a um número 

pequeno de publicações, onde os táxons estão registrados na forma de listagem ou em 

levantamentos florísticos gerais (Joly 1957, 1965, Yoneshigue-Braga 1970, Ugadim 

1973, Ugadim & Pereira 1978, Pereira et al. 1981, Teixeira et al. 1985, Pereira & 

Accioly 1998; Yoneshigue & Valentin 1988, Pereira et al. 2002, Oliveira-Carvalho et al.


2003, Yoneshigue-Valentin et al. 2006, Pereira et al. 2007). Poucos trabalhos tratam 

exclusivamente da taxonomia do grupo (Silva 1960 e Alves & Moura 2005). 

Até o presente momento, nenhum estudo filogenético abordando o gênero foi 

realizado no Brasil e, diante disto, o presente trabalho tem por finalidade de detectar 

relações filogenéticas entre as espécies de Codium ocorrentes no litoral brasileiro a 

partir das seqüências do éxon 1 do gene rbcL. 

MATERIAL E MÉTODOS 

Amostras de Codium. Em diversas localidades do litoral brasileiro, foram 

coletadas amostras de Codium para as análises moleculares (Tabela 1). Em campo, 

foram selecionadas as porções jovens do talo, e no intuito de remover possíveis epífitas, 

as porções foram limpas com auxílio de escova dental de cerdas flexíveis. Após a 

limpeza, as porções foram secas em papel toalha e cortadas em pequenos pedaços, com 

auxílio de tesouras ou estiletes, sendo imediatamente acondicionadas em recipientes 

plásticos devidamente etiquetados, contendo sílica gel e/ou etanol a 70%. 

Extração de DNA. A extração de DNA foi processada na Universidade de São 

Paulo (USP) no Laboratório de Algas Marinhas Edson José de Paula (LAM). As 

amostras de Codium foram submetidas ao protocolo manual de extração de DNA 

usando CTAB (brometo de cetiltrimetilamônio). O tampão de extração CTAB é 

constituído pelos seguintes reagentes (água deionizada miliq, CTAB a 2%, NaCl a 5%, 

0,5 M de EDTA, PVP a 1% e 1 M Tris-Hcl com pH 8). As amostras de Codium foram 

maceradas em nitrogênio líquido com auxílio de almofariz e pistilo, previamente 

resfriadas a -20 0 C, até a obtenção de um pó fino. O macerado foi adicionado a 700 μL 

do tampão CTAB, juntamente com 7 μL de proteinase K (20 mg/mL) previamente


aquecidos em tubo de eppendorf (1,5 mL) em banho seco a 60 0 C. O extrato foi 

incubado a 60 0 C por 30-40 minutos em banho seco. Após este período, adicionou-se à 

amostra 250 μL de acetato de potássio (KOAC) e conservou-se a -20 0 C por 30 minutos. 

A amostra foi centrifugada a 14.000 rpm a 4 0 C, por aproximadamente 30 minutos. A 

fase aquosa da amostra foi transferida para um novo tubo de eppendorf, onde foi 

adicionado um volume de clorofórmio: alcool isomílico (24:1), onde foi centrifugada 

por 10 minutos. Novamente foi transferida a fase aquosa para um novo tubo, 

adicionando-se um volume de clorofórmio: alcool isomílico, centrifugando por cinco 

minutos. A fase aquosa da amostra foi transferida para um novo tubo de eppendorf 

devidamente etiquetado, onde foi adicionado 0,8 volume de isopropanol (100%), 

incubando-a por um período de 30 minutos à -20 0 C. Após centrifugação (14.000 rpm) 

por 20 minutos, desprezou-se o sobrenadante e o tubo contendo o DNA foi seco em 

centrífuga a vácuo durante 30 minutos. O DNA da amostra foi diluído em 50 μL de 

tampão 0,1 X TE (Tris 10 mM, pH 8.0 e EDTA 1mM). As amostras de DNA total 

foram conservadas a -20 0 C. Para a verificação da qualidade e quantidade de DNA 

extraído, foi retirada uma alíquota de 5 μL do DNA, a qual foi submetido a eletroforese 

em gel de agarose 0,7% em TBE (Tris 445 mM, ácido bórico 445 mM e 10 mM 

EDTA), corado com brometo de etídio (Sambrook et al. 1989). 

Amplificação por PCR (Reação da Cadeia da Polimerase). Para a amplificação 

do éxon 1 do gene que codifica a subunidade grande (rbcL) da enzima ribulose - 1,5 - 

bifosfato carboxilase-oxigenase (rubisco), foram utilizados os seguintes primers: 12-34F 

(5’- AAC TGA AAC TAA AGC AGG TGC AG- 3’) e 799-778R (5’- GCA TRA TAA 

TAG GTA CGC CRA A-3’), conforme comunicação pessoal de H. Verbruggen, cujas 

seqüências dos primers estão publicadas em Verbruggen et al. 2007. Nas reações de


PCR, foram utilizados mini-tubos contendo as seguintes proporções: 39,25 μL de H2O 

miliq; 5μL de tampão 10X; 1,5 μL de MgCl2; 1μL de dNTP; 1 μL de cada primer; 1 μL 

de DNA total e 0,25 μL de Taq DNA polymerase, tendo volume final 50 μL. Os mini- 

tubos foram conduzidos para reação de PCR em termocilador Minicycler TM , (MJ 

Research) nos seguintes ciclos: 94 0 C por 4 min; 35X (94 0 C por 30 seg, 45 0 C por 1 min; 

72 0 C por 2 min) e 72 0 C por 7 min. O produto da PCR foi visualizado e qualificado em 

eletroforese em gel de agarose 0,7% corado com brometo de etídio conforme descrito 

acima (Sambrook et al. 1989). 

Purificação do produto da PCR. Para minimizar eventuais erros de 

incorporação de bases durante a PCR, foram realizadas três reações de PCR 

independentes para cada amostra de DNA, as quais foram reunidas antes da purificação 

(Baldwin et al. 1995). Os produtos obtidos foram purificados em colunas de 

MicroSpin TM (Amersham Pharmacia Biotech, Buckinghamshire), conforme o protocolo 

do fornecedor. O DNA purificado foi analisado em gel de agarose a 0,7% conforme 

descrito acima e quantificado através da comparação com marcador padrão (1 KB 

Ladder) da Invitrogen através da estimativa visual. 

Sequenciamento. A reação de sequenciamento foi feita com aproximadamente 

40 ng do produto de DNA purificado, através do kit de sequenciamento “BigDye TM 

Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction” da Applied Biosystems (Foster City, 

EUA). O kit de seqüenciamento é constituído por dNTP, dideoxinucleosídeos (ddNTP) 

com marcadores fluorescentes, tampão, cloreto de magnésio e enzima Taq polimerase. 

Para cada reação de seqüenciamento foram utilizadas as seguintes proporções: 2 μL de 

BigDye; 2 a 5 μL do DNA purificado (dependendo da amostra) e 1 μL de primer (10 

pmol). No sequenciamento, foi utilizado o primer 12-34F para as seqüências diretas e o


primer 799-778R para as seqüências reversas, em reações independentes. A reação de 

seqüenciamento foi realizada em termociclador MiniCycler (MJ Research) nas 

seguintes condições de ciclo: 40 X (96 0 C por 10 seg., 54 0 C por 20 seg., 60 0 C por 4 

min). As precipitações dos produtos obtidos foram feitas adicionando-se aos mini-tubos 

40 μL de isopropanol (65%), os quais foram envolvidos em papel alumínio e mantidos 

em temperatura ambiente por 20 minutos. Logo em seguida, as amostras foram 

centrifugadas a 14.000 rpm por 25 minutos em temperatura ambiente, e os 

sobrenadantes foram descartados com auxílio de micropipetas. Nos mini-tubos, foram 

adicionados 200 μL de Etanol (60%), onde foram novamente centrifugados a 14.000 

rpm por 10 minutos em temperatura ambiente e os sobrenadantes desprezados com 

auxílio de micropipetas. O produto foi seco em centrifuga a vácuo por 

aproximadamente 30 minutos. As amostras de DNA foram seqüenciadas em 

seqüenciador automático ABI PRISM TM 3100 Genetic Analizer (Applied Biosystems). 

Construção das matrizes de alinhamento - Seqüências consenso do exon 1 do rbcL 

foram obtidas neste trabalho para 24 amostras de Codium (Tabela 1). Cada seqüência 

consenso foi montada a partir de duas ou mais seqüências geradas pelos primers 12-34F 

(F: direto) e 799-778R (R: reverso) no programa BioEdit (Hall 1999). Os 

cromatogramas foram checados quando ocorriam divergências entre as seqüências F e 

R; caso não fosse possível resolver as divergências, o seqüenciamento era repetido. As 

seqüências foram comparadas a outras disponíveis no GenBank utilizado a ferramenta 

BLASTN (Altschul et al. 1990). As seqüências obtidas para as 24 amostras de Codium 

foram comparadas através de uma matriz de distância genética utilizando o programa 

BioEdit para a identificação de seqüências idênticas entre as diferentes amostras. As dez 

seqüências consenso únicas do exon 1 do rbcL obtidas neste trabalho para as amostras


de Codium coletadas no Brasil e as seqüências das espécies importadas do GenBank 

(Tabela 2) foram alinhadas utilizando o programa ClustalW dentro do BioEdit (Hall 

1999). O alinhamento gerado foi inspecionado visualmente. Seqüências correspondentes 

aos primers de amplificação e regiões terminais 5’e 3’ foram removidas dos 

alinhamentos gerando uma matriz de 50 seqüências com 613 posições. Posteriormente 

foi incluída nessa matriz a seqüência de Bryopsis plumosa (Hudson) C. Agardh 

(GenBank accession nº. AB038480) para as análises feitas com grupo externo. 

Inferências filogenéticas. Todas as análises filogenéticas foram feitas no 

programa PAUP 4.0b8 (Swofford 2000). O modelo evolutivo apropriado foi 

selecionado no Modeltest (Posada & Crandall 1998). Foram feitos dois conjuntos de 

análises, um gerando árvores não enraizadas e outro onde foi adicionada a seqüência de 

Bryopsis plumosa como grupo externo. Para as árvores sem o grupo externo (não 

enraizadas), o modelo escolhido, estimado a partir dos dados da matriz, foi GTR+I+G 

(no AIC - Akaike Information Criterion) com as seguintes freqüências de base: A = 

0.3239, C = 0.1049, G = 0.1882, T = 0.3830. O modelo de substituição de bases foi 

determinado como [A↔C] = 1.1316, [A↔T] = 0.4761, [A↔G] = 1.1661, [C↔G] = 

1.1588, [G↔T] = 1.0000, e [C↔T] = 1.7783. A proporção de sítios invariáveis 

considerada foi de 0.6589 e o parâmetro de distribuição gama foi de 0.6103 para taxa de 

heterogeneidade em sítios variáveis. As árvores foram inferidas a partir de três métodos 

distintos: distância, máxima parcimônia e máxima verossimilhança. Para o método de 

distância, foi construída uma árvore de neighbour-joining (NJ) (Saitou & Nei 1987) 

com o modelo de substituição de Tamura & Nei (1993). A árvore de máxima 

parcimônia (MP) foi inferida por busca heurística. Foram considerados 115 sítios 

informativos. Para ambos os métodos descritos acima os ramos foram rearranjados pelo


algoritmo “tree bisection-reconnection” (TBR) e foram feitas análises de “bootstrap” 

(Felsenstein 1985) com 2000 replicatas. 

A árvore de máxima verossimilhança (ML) foi inferida por busca heuritica 

rápida. As outras especificações foram estimadas pelo Modeltest, conforme descrito 

acima para a árvore de NJ. A reamostragem por “bootstrap” foi feita para 100 replicatas 

devido a limitações computacionais. As mesmas análises de inferências filogenéticas 

para NJ, MP (com 1000 replicatas de “bootstrap” cada) e ML (com 100 replicatas de 

“bootstrap”) foram repetidas conforme descrito acima para a mesma matriz, mas com a 

adição de um grupo externo (B. plumosa) gerando, desse modo, árvores enraizadas. Para 

essa matriz de 51 seqüências e 613 posições foi feita nova análise no Modeltest (Posada 

& Crandall 1998) e o modelo selecionado foi GTR+I+G (no AIC - Akaike Information 

Criterion) com as seguintes freqüências de base: A = 0.3273, C = 0.1108, G = 0.1800, T 

= 0.3818. O modelo de substituição de bases foi determinado como [A↔C] = 1.0458, 

[A↔T] = 0.4877, [A↔G] = 1.1583, [C↔G] = 1.1262, [G↔T] = 1.0000, e [C↔T] = 

1.7616. A proporção de sítios invariáveis considerada foi de 0.6382 e o parâmetro de 

distribuição gama foi de 0.5857 para taxa de heterogeneidade em sítios variáveis. 

Para todas as análises, os valores de “bootstrap” foram considerados baixos até 70%, 

moderados de 71% a 90% e altos acima de 90%. 

RESULTADOS 

Foram feitas extrações de DNA para 25 amostras de Codium sendo que dessas 

para 24 foi possível obter produto de PCR com os primers 12-34F e 799-778R que 

amplificam o éxon 1 do gene rbcL. Apenas para a amostra identificada como C. 

intertextum coletada na Praia do Rio Vermelho, Bahia, não foi possível amplificar e 

seqüenciar esse marcador molecular. Entretanto, o não sequenciamento desta amostra


não interferiu na análise dos dados, uma vez que, outra amostra da mesma espécie para 

o estado da Bahia foi seqüenciada. Para as demais amostras amplificadas e seqüenciadas 

o tamanho do éxon 1 do gene rbcL, incluindo os primers de PCR foi de 788 

nucleotídeos. 

As seqüências obtidas para as 24 amostras de Codium foram comparadas através 

de uma matriz de distância genética (Anexo 1). A partir dessa matriz, foi possível 

identificar quais amostras possuíam seqüências idênticas para o éxon 1 do gene rbcL; 

essa comparação resultou em dez seqüências únicas (Tabela 3). Para C. decorticatum 

foram obtidas duas amostras do estado de Santa Catarina e duas do estado do Rio de 

Janeiro, e as seqüências foram idênticas para as quatro amostras. O mesmo aconteceu 

para as sete amostras de C. intertextum coletadas desde Santa Catarina até o estado da 

Bahia, e incluindo a amostra de Fernando de Noronha (estado de Pernambuco), para as 

três amostras de C. spongiosum coletadas na costa sudeste, e para duas amostras de C. 

repens coletadas em Pernambuco. Para as cinco amostras de C. taylorii foi observada 

uma divergência de no máximo 0,5%, sendo que as amostras do estado de São Paulo, 

Rio de Janeiro se mostraram idênticas e das três amostras coletadas na Bahia, duas 

foram idênticas. A amostra Ctay9BA apresentou apenas dois nucleotídeos de 

divergência para as demais amostras da BA; como esses dois nucleotídeos estavam no 

início da seqüência que foi removido na matriz gerada para as análises filogenéticas (ver 

material e métodos), essa amostra passou a ser considerada na matriz como idêntica a 

Ctay07BA. As três amostras de C. isthmocladum apresentaram divergências de 0,12 

(para as amostras da Bahia e da Paraíba) a 1,4% (entre as amostras do Nordeste e a do 

Espírito Santo). A maior divergência intra-específica encontrada foi observada para C. 

isthmocladum de 1,4 % (11 nucleotídeos). As divergências observadas entre espécies


variaram de 1,9% (15 nucleotídeos) entre C. intertextum e C. spongiosum a 10,2% (80 

nucleotídeos) entre C. intertextum e C. isthmocladum. 

Inicialmente para as análises filogenéticas foram selecionadas todas as 

seqüências do éxon 1 do rbcL de Codium disponíveis no GenBank, com isso a matriz 

inicial ficou com 126 seqüências de tamanhos variados. Devido à limitação 

computacional para analisar uma matriz tão grande, as seqüências geradas neste 

trabalho foram enviadas para o Dr. Verbruggen (Ghent University) que fez uma análise 

preliminar com sua matriz com 328 seqüências de Codium (a maioria ainda não 

disponível nos bancos de dados). A partir dessa análise, foram selecionadas 41 

seqüências representativas dos ramos principais, eliminando aquelas cuja seqüência era 

muito curta ou que se encontravam posicionadas em ramos longos para evitar distorções 

na árvore (“long branch attraction”; Holland et al. 2003). Além disso, foram incluídos 

todos os táxons próximos às amostras brasileiras analisadas por nós. A partir dessa 

seleção de táxons, foi gerada uma matriz com 50 seqüências, incluindo as seqüências 

brasileiras, que foi analisada de forma não-enraizada através de três diferentes métodos 

de inferência filogenética, “neighbour-joining” (NJ), máxima parcimônia (MP) e 

máxima verossimilhança (ML), representadas respectivamente pelos anexos 2, 3 e 4. A 

Fig 1 resume os resultados encontrados nas três análises. 

As mesmas análises foram realizadas a partir da mesma matriz com 50 

seqüências, mas com a adição de Bryopsis plumosa como grupo externo, gerando as 

seguintes árvores enraizadas “neighbour-joining” (NJ), máxima parcimônia (MP) e 

máxima verossimilhança (ML), representadas respectivamente pelos anexos 5, 6 e 7. A 

Fig. 2 resume os resultados encontrados nas três análises.


Em todas as análises feitas, alguns agrupamentos monofiléticos foram 

constantes. O agrupamento denominado de A (Fig. 1, 2) apresentou altos valores de 

“Bootstrap” (98 a 100%) em todas as análises e inclui duas espécies seqüenciadas nesse 

trabalho: C spongiosum que agrupou em todas as análises (com valores de “bootstrap” 

de 55 a 96%) com duas outras amostras da mesma espécie, uma do Japão e outra da 

África do Sul; e C. intertextum que agrupou com outra amostra dessa espécie 

proveniente da Jamaica. Em ambos os casos as análises moleculares confirmam a 

identificação da espécie feita através da análise dos caracteres morfológicos (Oliveira- 

Carvalho et al. dados não publicados). Outros táxons como C. hubsii, C. lucasii, C. 

arabicum e C. convolutum fazem também parte desse agrupamento A. Nas análises 

onde foi utilizada Bryopsis plumosa como grupo externo o agrupamento A é basal às 

demais espécie de Codium (Fig. 2). 

Outro agrupamento monofilético que se formou em todas as análises com 

moderado a altos valores de “Bootstrap” (65 a 100%) foi denominado de B e inclui uma 

espécie seqüenciada nesse trabalho, C decorticatum que na análise incluindo o grupo 

externo B. plumosa se agrupou com outra amostra do mesmo táxon proveniente da costa 

Atlântica dos E.U.A. Esse agrupamento também incluiu C. duthieae e C. cylindricum. 

Nas análises com a adição do grupo externo (Fig. 2), esse agrupamento é enraizado 

pelos táxons C. galeatum, C. yezoensis e C. fragile, porém com baixos valores de 

“bootstrap”, sendo que nas análises não enraizadas esses táxons aparecem como uma 

politomia (Fig. 1). 

O terceiro agrupamento monofilético denominado de C que se formou em todas 

as análises (com suporte de “bootstrap” de 51 a 96%), com exceção da análise de ML, 

com adição do grupo externo incluiu diversos táxons e três subgrupos monofiléticos,


além de uma politomia na sua base que inclui os táxons C. bursa, C. gracile, C. latum, 

C. ovale, C. contractum, C. cf. latum e C. platycladus (Fig. 1, 2). Nos três subgrupos 

monofiléticos, denominados de C1, C2 e C3 encontram-se amostras brasileiras 

seqüenciadas nesse trabalho. 

O subgrupo C1 teve suporte de “bootstrap” de 51 a 96% para as análises de MP 

e ML nas árvores não-enraizadas e com adição de grupo externo. Nesse subgrupo está 

incluída C. repens do Brasil que se agrupou com Codium sp. e C. repens ambas do 

Caribe e C. cf. tenue das Filipinas, enraizados em todas as análises por C. geppiorum 

(EF108021) de Belize e por C. intricatum do Japão nas análises de MP e ML. 

O subgrupo C2, com suporte de “bootstrap” de 81 a 100% em todas as análises, 

inclui as amostras de C. taylorii do Brasil que se agruparam com as outras amostras da 

mesma espécie provenientes do Caribe e da Florida (E.U.A.), enraizadas por outra C. 

geppiorum (EF108020) de Oman. 

O subgrupo C3, com suporte de “bootstrap” de 76 a 86% em todas as análises, 

inclui três amostras brasileiras de C. isthmocladum que se agruparam com outras três 

amostras dessa mesma espécie de outros locais (com suporte de “bootstrap” de 94 a 

99% em todas as análises), enraizada por C. platylobium J. E. Areschoug da África do 

Sul que por sua vez está enraizada por uma terceira, C. geppiorum O. C. Schimidt 

(EF108012) do Sri Lanka, e C. isthmocladum (EF108036) da Flórida (E.U.A.). Das três 

amostras de C. isthmocladum coletadas no Brasil, duas delas (Cist11PB e Cist15BA) se 

agruparam com duas amostras provenientes do Caribe com altos valores de “bootstrap” 

(91 a 100%) em todas as análises. A terceira (Cist03ES) se agrupou com C. 

isthmocladum subsp. clavatum (EF108025) também do Caribe (com altos valores de 

“bootstrap” 96 a 100% em todas as análises).


Além dos grupos monofiléticos formados já descritos, nas análises não- 

enraizadas de NJ e ML C. megalophysum P. C. Silva e C. cranwelliae Setchell 

agruparam com suporte moderado de “bootstrap” (84 e 74% respectivamente). 

DISCUSSÃO 

A taxonomia baseada apenas em caracteres morfológicos para Codium é 

extremamente complexa, dado o grande número de espécies descritas para o gênero, a 

grande plasticidade fenotípica e sua ampla distribuição geográfica. Seqüências 

moleculares para o exon 1 do gene rbcL têm se mostrado adequadas para a identificação 

e delineação de espécies, além de prover um arcabouço filogenético que pode ser usado 

para avaliar a utilidade dos caracteres morfológicos, hipóteses biogeográficas, 

ocorrência de espécies crípticas e identificação de espécies invasoras (Shimada et al. 

2004; Verbruggen et al. 2007). 

Embora Verbruggen et al. (2007) tenham feito uma ampla análise filogenética 

incluindo centenas de amostras de Codium de todo o mundo, essa análise é 

relativamente pobre em espécies do Oceano Atlântico Americano, e nenhuma espécie 

coletada no Brasil foi incluída. Além disso, os mesmos autores argumentam que apenas 

através de análises regionais, baseadas em uma análise detalhada da morfologia e em 

análises de marcadores moleculares será possível obter um conhecimento mais 

abrangente sobre a taxonomia e filogenia das espécies de Codium. 

Neste trabalho foram analisadas 24 amostras atribuídas a seis espécies da costa 

brasileira, coletadas de Santa Catarina até a Paraíba. As divergências observadas no 

exon 1 do rbcL entre espécies brasileiras variaram de 1,9% entre C. intertextum e C. 

spongiosum a 10,2% entre C. intertextum e C. isthmocladum. Segundo Verbruggen et


al. (2007) a maior divergência entre espécies de Codium não passa de 14%, sendo que 

as divergências entre os gêneros os Codium e Bryopsis J. V. Lamouroux são de no 

mínimo 16%. 

Utilizando-se as seqüências geradas para o éxon 1 do rbcL das amostras 

brasileiras e outras seqüências disponíveis no GenBank foram feitas análises 

filogenéticas não-enraizadas e enraizadas com a adição de um grupo externo. O uso ou 

não de um grupo externo é uma questão bastante complexa nas análises filogenéticas 

para o gênero Codium, amplamente discutida em Verbruggen et al. (2007). Esses 

autores consideram que a seqüência disponível mais próxima de Codium é de Bryopsis 

plumosa (Huds.) C. Agardh 

, ambas pertencentes à ordem Bryopsidales (Lam & Zechman 2006); mesmo 

assim, as seqüências dos dois gêneros apresentam uma considerável divergência que 

pode levar a uma distorção das árvores pelo efeito de “atração de ramos longos” (“long 

branch attraction”). Para evitar tal efeito, fizemos análises não-enraizadas e removemos 

da matriz de alinhamento os táxons situados em ramos longos (ou seja, táxons bastante 

divergentes) e que não tinham relação direta com as espécies brasileiras. A seleção dos 

táxons para inclusão nas análises foi possível graças a uma análise prévia feita pelo Dr. 

H. Verbruggen onde ele incluiu as seqüências geradas neste estudo em sua grande 

matriz de dados. Tomada essa precaução da remoção de táxons situados em ramos 

longos, as análises obtidas para as árvores enraizadas e não-enraizadas deram resultados 

semelhantes, sendo possível observar três agrupamentos monofiléticos principais 

denominados de A, B e C em todas as análises. Os resultados obtidos no presente estudo 

se assemelham muito com as análises de Verbruggen et al. (2007) e a inclusão das 

amostras brasileiras corrobora as análises apresentadas por esses autores.


Nas análises, o agrupamento A que se refere ao ramo basal da árvore enraizada, 

está representado por espécies de hábito prostrado, ausentes de ramificação, 

pertencentes ao subgênero Tylecodium. Neste agrupamento, estão inseridas duas 

espécies encontradas no Brasil (C spongiosum e C. intertextum), sendo esta última 

formadora de tapetes nos substratos rochosos. No agrupamento A, encontram-se as 

espécies que possuem utrículos predominantemente agrupados e estreitos, corroborando 

os dados obtidos por Verbruggen et al. (2007). 

Espécies pertencentes ao subgênero Shizocodium foram predominantes nos 

demais agrupamentos. O agrupamento B consiste de espécies de hábito ereto, com 

ramos predominantemente cilíndricos, com ramificações dicotômicas, sendo 

caracterizadas por utrículos individuais e grandes. Neste agrupamento, apenas uma 

espécie (C. decorticatum) coletada no Brasil esteve presente. O agrupamento C (C1, C2 

e C3) em sua maioria está constituído por espécies de hábito ereto, com ramos 

cilíndricos a levemente achatados, utrículos geralmente individuais, com tamanhos 

intermediários. Neste agrupamento, três espécies coletadas no Brasil estiveram 

presentes, uma de hábito procumbente (C. repens) e duas de hábito ereto (C. 

isthmocladum e C. taylorii), reforçando os dados obtidos por Verbruggen et al. (2007). 

Como demonstrado nas árvores filogenéticas, as amostras brasileiras aparecem 

espalhadas nos três agrupamentos monofiléticos principais, indicando claramente a 

presença de espécies que colonizaram a costa Atlântica Americana proveniente de floras 

de diferentes localidades geográficas. Para que isso tenha ocorrido, pressupõe-se um 

eficiente mecanismo de dispersão, possivelmente através de porções vegetativas que se 

fragmentam e são carregadas pelas correntes, ou por outros fatores como, por exemplo, 

a espécie C. fragile subsp. tomentosoides nativa do Japão, considerada como a


macroalga mais invasiva no mundo. A dispersão dessa espécie está provavelmente 

relacionada à intervenção humana através das embarcações e também associada à 

aquacultura de moluscos (Ranus 1971, Dromgoole 1975, Trowbridge & Todd 1999, 

Bégin & Sheibling 2003). 

Os três agrupamentos principais observados nas nossas árvores filogenéticas 

incluem espécies dos três principais oceanos (Atlântico, Pacífico e Índico). A 

diversidade maior de espécies está no Indo-Pacífico sendo que as espécies do Atlântico 

geralmente estão em clados derivados de espécies do Indo-Pacífico. Essas análises 

indicam uma origem e diversificação do gênero no Indo-Pacífico, sendo que suas 

espécies dispersaram para o Atlântico em diferentes ocasiões (Verbruggen et al. 2007). 

Entretanto, algumas espécies parecem ter se diversificado e permanecido restritas ao 

oceano Atlântico americano, como é o caso de C. isthmocladum, C. taylorii, C. 

decorticatum e C. intertextum. Por outro lado, C. spongiosum parece ser uma espécie 

cosmopolita, que está presente no Atlântico e no Indo-Pacífico. A circunscrição das 

espécies e de suas distribuições geográficas ainda depende de estudos mais 

regionalizados. 

Nas análises, verifica-se que na árvore enraizada, como também na árvore não- 

enraizada, C. geppiorum esteve amplamente distribuída no grupo monofilético C, 

estando presente nos três subgrupos (C1, C2 e C3). Esta espécie está inserida no 

complexo C. geppiorrum, o qual está constituído por espécies de talos rastejantes, 

procumbentes ou decumbentes, anastomosados, encontrados principalmente na Região 

Indo-Pacífica, e muito próxima taxonomicamente com C. repens do Atlântico (Silva 

1960, Jones & Kraft 1984, Chang et al. 2002). Neste caso, fica evidente que é uma 

espécie mal delineada e necessita, portanto, de uma revisão acurada na sua taxonomia.


Segundo Chang et al. (2002) os táxons que compõem o complexo C. geppiorum 

apresentam uma taxonomia ainda mal delineada e freqüentemente são confundidas 

devido ao contínuum encontrado no tamanho dos utrículos e outros caracteres 

morfológicos similares. 

Em geral, a taxonomia do gênero Codium está baseada na comparação dos 

caracteres morfológicos e anatômicos. No entanto, em alguns casos, é difícil fazer uma 

identificação apurada devido à ausência de caracteres estáveis. Isto ocorre porque estes 

caracteres morfológicos apresentam extrema variação dentro da mesma espécie e entre 

populações (Silva 1951, Chacana et al. 1996, Pedroche et al. 2002, Shimada et al. 

2004). 

Apesar dos caracteres morfológicos serem insuficientes para uma análise mais 

ampla das espécies de Codium, como é relatada pelos autores acima, as análises desses 

caracteres levaram a identificações específicas, que foram corroboradas pelas análises 

de filogenia molecular para as amostras brasileiras. As espécies brasileiras seqüenciadas 

neste estudo se agruparam com amostras identificadas sob a mesma designação 

específica em clados monofiléticos, como C. spongiosum, C. taylorii, C. decorticatum, 

e C. intertextum. As amostras de C. isthmocladum coletadas no Brasil agruparam-se 

com outras três amostras do Caribe em um clado monofilético, entretanto, uma amostra 

identificada também como C. isthmocladum do Atântico dos E.U.A. não está 

posicionada nesse clado. Sugerimos, neste caso, uma revisão na taxonomia dessa 

espécie. 

Neste estudo, a utilização do marcador molecular rbcL mostrou-se bastante útil 

na distinção de espécies de Codium e na construção de um arcabouço filogenético que 

permite uma análise mais detalhada das relações evolutivas e biogeográficas dessas


espécies, assim como foi verificado por Shimada et al. (2004) e Verbruggen et al. 

(2007). 

AGRADECIMENTOS 

As autoras agradecem à Silvia R. Blanco da Universidade de São Paulo, pelo 

auxílio nas reações de seqüenciamento. Ao Biólogo e técnico Rosário Petti do 

Laboratório de Algas Marinhas (LAM) da Universidade São Paulo, pela ajuda durante o 

desenvolvimento deste trabalho. Ao Dr. Heroen Verbruggen pelas as análises 

filogenéticas preliminares. Às agências de fomento, CNPq pelo apoio financeiro e 

bolsas e a Capes pela concessão de bolsa de Doutorado à primeira autora. 

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ANEXOS DO MANUSCRITO II

TABELAS

Tabela 1 - Amostras de Codium que tiveram seu exon 1 do rbcL seqüenciados neste trabalho com respectivas informações de coleta. (PEUFR – 

Herbário Professor Vasconcelos Sobrinho da Universidade Federal Rural de Pernambuco). 

Espécies Local de Coleta Coletor Data Sigla Voucher n o 

C. decorticatum Florianópolis (Praia da Armação), SC S. M. P. B. Guimarães 27 Nov 2005 Cdec5SC PEUFR 48525 

C. decorticatum Florianópolis (Praia Ponta das Canas), SC M. F.Oliveira-Carvalho & P. Horta. 21 Set 2006 Cdec23SC PEUFR 48529 

C. decorticatum Cabo Frio (Praia do Peró), RJ V. Cassano 18 jul 2006 Cdec16RJ PEUFR 48533 

C. decorticatum Rio de Janeiro (Praia dos Cavaleiros), RJ L. M. Gestinari 11 Mai 2006 Cdec24RJ PEUFR 48532 

C. repens Cabo de Santo Agostinho (Praia do Paiva), PE M. F. Oliveira-Carvalho 28 Abr 2005. Crep1PE PEUFR48573 

C. repens Ilha de Sto. Aleixo, PE 

M. F. Oliveira-Carvalho & S. M. B. 

Pereira 

31 Jan 2005 Crep22PE PEUFR 48574 

C. intertextum Vila Velha (Praia da Baleia), ES D. Barata 25 Mai 2005 Cint6ES PEUFR 48557 

C. intertextum Vila Velha (Praia da Baleia), ES D. Barata 01 Jun 2006 Cint4ES PEUFR 48558 

C. intertextum Canal de São Sebastião, SP M. F Oliveira-Carvalho & F. Berchez 14 Jul 2006 Cint10SP PEUFR 48560 

C. intertextum Cabo Frio (Praia do Peró), RJ V. Cassano 28 Jul 2006 Cint17RJ PEUFR 48563 

C. intertextum Salvador (Praia Stela Mares), BA D. Barata 15 Set 2006 Cint18BA PEUFR 48547 


Arquip. Fernando de Noronha (Praia do Boldró), 

PE 

P. Horta 14 Jun 2006 Cint21FN PEUFR 48567 

C. intertextum Florianópolis (Praia do Gravatá), SC M. F. Oliveira-Carvalho & P. Horta 22 Set 2006 Cint25SC PEUFR 48554 

C. isthmocladum Florianópolis (costa, prof. 25m), ES S. M. P. B. Guimarães & G. A. Filho 09 Nov 2005 Cist3ES PEUFR 48496 

C. isthmocladum João Pessoa (Praia do Bessa), PB M. F. Oliveira-Carvalho & P. Horta 01 Jun 2005 Cist11PB PEUFR 48504 

C. isthmocladum Ilha de Itaparica (Mar Grande), BA 

M. F. Oliveira-Carvalho & M. C. 

Accioly 

18 Set 2005 Cist15BA PEUFR 48498

Cont. Tab. 1 

C. spongiosum Búzios (Praia do Forno), RJ M. F. Oliveira-Carvalho & V. Cassano 27 Jul 2006 Cspo12RJ PEUFR 48542 

C. spongiosum Arraial do Cabo (Praia Mar Grande), RJ V. Cassano 11 Ago 2006 Cspo14RJ PEUFR 48541 

C. spongiosum Vila Velha (Praia da Baleia), ES D. Barata 27 Fev 2006 Cspo13ES PEUFR 48543 

C. taylorii Canal de São Sebastião, SP 

M. F. Oliveira-Carvalho & M. M. 

Mosca 

14 Jul 2006 Ctay2SP PEUFR 48522 

C. taylorii Cabo Frio (Praia de Peró), RJ V. Cassano 28 Jul 2006 Ctay19RJ PEUFR 48523 

C. talorii Salvador (Praia de Jauá), BA 

C. taylorii Salvador (Praia de Guarajuba), BA 

C. taylorii Salvador (Praia de Itapoã), BA 


Accioly 


Accioly 


Accioly 

19 Nov 2005 Ctay07BA PEUFR 48525 

17 Set. 2005 Ctay09BA PEUFR 48514 

17 Set 2006 Ctay20BA PEUFR 48513

Tabela 2 - Seqüências do exon 1 do rbcL obtidas no GenBank de Codium e Bryopsis com os respectivos números de acesso, localidade de coleta e 

referências . 

Espécies 

N° de Acesso 

GenBank 

Localidade Referência 

C. arabicum Kutzing AB102985 Japão Shimada et al. (2003) 

C. arabicum Kutzing EF107969 Austrália Verbruggen et al. (2007) 

C. bursa (Linnaeus) C. Agardh EF107970 Croácia Verbruggen et al. (2007) 

C. contractum Kjelman AB102995 Japão Shimada et al. (2003) 

C. convolutum (Dellow) P. C. Silva EF107975 Tristão da Cunha, Atlântico Sul Verbruggen et al. (2007) 

C. cranwelliae Setchell EF107979 Nova Zelândia Verbruggen et al. (2007) 

C. cylindricum Colmes AB103027 Japão Shimada et al. (2003) 

C. decorticatum (Woodward) Howe EF107980 Carolina do Norte- USA Verbruggen et al. (2007) 

C. duthieae P. C. Silva EF107983 África do Sul Verbruggen et al. (2007) 

C. duthieae P. C. Silva EF107988 Oman Verbruggen et al. (2007) 

C. fragile (Suringar) Hariot M67453 No voucher Manhart & VonderHaar (1991) 

C. galeatum J. Agardh EF108003 Austrália Verbruggen et al. (2007) 

C. geppiorum O. C. Schmidt EF108020 Oman Verbruggen et al. (2007) 

C. geppiorum O. C. Schmidt EF108021 Belize Verbruggen et al. (2007)

Cont. Tab. 2 

C. geppiorum O. C. Schmidt EF108012 Sri Lanka Verbruggen et al. (2007) 

C. gracile (O. C. Schmidt) Dellow EF108022 Nova Zelândia Verbruggen et al. (2007) 

C. hubbsii E. Y. Dawson AB102967 Japão Shimada et al. (2003) 

C. intertextum F. S. Collins et Hervey EF108023 Jamaica Verbruggen et al. (2007) 

C. intricatum Okamura AB102993 Japão Shimada et al. (2003) 

C. isthmocladum Vickers EF108025 Anguilla, Atlântico Sul Verbruggen et al. (2007) 

C. isthmocladum Vickers EF108026 Porto Rico Verbruggen et al. (2007) 

C. isthmocladum Vickers EF108027 Martinique Verbruggen et al. (2007) 

C. isthmocladum Vickers EF108036 Flórida-USA Verbruggen et al. (2007) 

C. latum Suringar AB103004 Japão Shimada et al. (2003) 

C. lucasii Setchell AB102981 Japão Shimada et al. (2003) 

C. lucasii Setchell EF108057 Oman Verbruggen et al. (2007) 

C. megalophysum P. C. Silva EF108058 África do Sul Verbruggen et al. (2007) 

C. ovale Zanardini EF108063 Fujii Verbruggen et al. (2007) 

C. platyclados P. Jones & Kraft EF108065 Austrália Verbruggen et al. (2007) 

C. platylobium Areschoug EF108067 África do Sul Verbruggen et al. (2007) 

C. repens Crouan et Crouan EF108069 Jamaica Verbruggen et al. (2007)

Cont. tab 2 

C. spongiosum Harvey AB102978 Japão Shimada et al. (2003) 

C. spongiosum Harvey EF108076 África do Sul Verbruggen et al. (2007) 

C. taylorii P. C. Silva EF108085 Flórida-USA Verbruggen et al. (2007) 

C. taylorii P. C. Silva EF108083 Jamaica Verbruggen et al. (2007) 

C. taylorii P. C. Silva EF108077 Guadalupe Verbruggen et al. (2007) 

C. tenue (Kutzing) Kutzing EF108091 Filipinas Verbruggen et al. (2007) 

C. yezoense (Tokida) Vinogradova AB103024 Japão Shimada et al. (2003) 

Codium cf. bursa EF107973 Oman Verbruggen et al. (2007) 

Codium cf .latum EF108050 Oman Verbruggen et al. (2007) 

Codium cf. tenue EF108091 Filipinas Verbruggen et al. (2007) 

Codium sp. EF108096 Martinique Verbruggen et al. (2007) 

Bryopsis plumosa (Hudson) C. Agardh AB038480 - Hanyuda et al. (2000)

Tabela 3 - Porcentagem de identidade (triângulo de baixo) e divergência em número de nucleotídeos (triângulo de cima) entre as seqüências do exon 1 

do rbcL das espécies de Codium coletadas no Brasil, Cdec = C. decorticatum, Crep = C. repens, Cspo = C. spongiosum, Ctay = C. taylorii, Cist = C. 

isthmocladum e Cint = C. intertextum. O nome da espécie é seguido do número da amostra e da sigla do estado onde foi coletada e ID, seqüências 

idênticas. 

Amostras de Codium sequenciadas no 

litoral Brasileiro 

Cdec23SC, Cdec5SC, Cdec16RJ , 

Cdec24RJ 

Cdec23SC, Cdec5SC, 

Cdec16RJ , Cdec24RJ 

Crep1PE, Crep22PE 

Cspo12RJ , Cspo13ES, 

Cspo14RJ 

Ctay2SP, Ctay19RJ 

Ctay7BA, Ctay20BA 

Ctay9BA 

Cist11PB 

Cist3ES 

Cist15BA 

Cint10SP, Cint17RJ, 

Cint18BA, Cint21FN, 

Cint25SC, Cint4ES, 

Cint6 ES 

ID 60 69 61 56 57 71 68 71 70 

Crep1PE, Crep22PE 92,38 ID 67 29 30 32 37 38 37 67 

Cspo12RJ , Cspo13ES, Cspo14RJ 91,12 91,50 ID 70 69 67 80 80 80 15 

Ctay2SP, Ctay19RJ 92,26 96,32 91,12 ID 2 4 44 43 44 69 

Ctay7BA, Ctay20BA 92,39 96,20 91,24 99,74 ID 2 46 43 46 69 

Ctay9BA 92,67 95,94 91,50 99,50 99,75 ID 48 11 48 67 

Cist11PB 90,99 95,30 89,85 94,42 94,16 93,91 ID 11 1 80 

Cist3ES 91,37 95,18 89,85 94,54, 94,54 94,29 98,60 ID 11 80 

Cist15BA 90,99 95,30 89,85 94,42 94,16 93,91 99,88 98,60 ID 80 

Cint10SP, Cint17RJ, Cint18BA, 

Cint21FN, Cint25SC, Cint4ES, Cint6 ES 

91,12 91,50 98,10 91,24 91,24 91,50 89,85 89,85 89,84 ID

FIGURAS

C. decorticatum SC23, 5SC, 16RJ, 24RJ B 

68, 63, 62 

C. repens 1PE, 22PE 

Codium sp (EF108096) - Martinique 

a = 50, -, 53 

68 ,79, 82 

a 

- ,70, 69 

Codium cf. tenue (EF108091) - Filipinas 

C. repens (EF108069) –Jamaica 

C. geppiorum (EF108021) - Oman 

C. intricatum (AB102993) - Japão 

C. taylorii 2SP, 19RJ 

C1 

b = 88, 81, 91 

82, 92, 68 

100, 100, 81 

C. taylorii 7BA, 9BA, 20BA 

C. taylorii (EF108085) – USA, AS 

C. taylorii (EF108083) – Jamaica 

C. taylorii (EF108077) – Guadalupe 


C. isthmocladum 11PB 

C2 

100, 95, 94 C. isthmocladum 15BA 

98, 99, 94 C. isthmocladum (EF108026) – Porto Rico 

b 

94 , 69,51 

C. isthmocladum (EF108027) - Martinique 

-, 65, 52 c C. isthmocladum 3ES 

C. isthmocladum (EF108025) – Anguilla 

C = 100, 99, 96 

C. platylobium (EF108067) – Äfrica do Sul 

C3 

78, 85, 81 C. geppiorum (EF108012) – Sri-Lanka 

C. isthmocladum (EF108036) – USA, AN 

C. latum (AB103004) - Japão 

C. ovale (EF108063) - Fujii 

C. contractum (AB102995) – Japão 

Codium cf. latum (EF108050) - Oman 

C. platyclados (EF108065) – Austrália 

C. gracile (EF108022) – Nova Zelândia 

C. bursa (EF107970) – Croácia 

100, 88, 69 

95, 86, 58 

C. spongiosum 12RJ, 13ES,14RJ 

C. spongiosum (AB102978) – Japão 

* 17RJ, 18BA, 21FN, 

25SC, 4ES, 6ES 

97, 98, 88 

C. spongiosum (EF108076) - África do Sul 

C. intertextum 10SP * 

C. intertextum (EF108023) – Jamaica 

67, 76, 59 

C. arabicum (AB102985) - Japão A 

100, 99, 92 C. arabicum (EF107969) - Austrália 

100, 100, 100 

C. hubbsii (AB102967) - Japão 

C. lucasii (EF108057) - Oman 

C. lucasii (AB102981) – Japão 

C. convolutum (EF107975) – Tristão da Cunha, 

Atlântico Sul 

Codium cf. bursa (EF107973) - Oman 

C. galeatum (EF108003) - Austrália 

C. yezoense (AB103024) – Japão 

C. fragile (M67453) - ? 

59, 68, 56 

84, -, 74 

C. megalophysum (EF108058) – África do Sul 

C. cranwelliae (EF107979) – Nova Zelândia 

C. duthieae (EF107983) – África do Sul 

C. duthieae (EF107988) - Oman 

C. cylindricum (AB103027) – Japão 

C. decorticatum (EF107980) – USA, AN 

B 

0.01 substitutions/site 

Fig. 1 - Árvore consenso não-enraizada de máxima verossimilhança (ML) construída para as 

seqüências do exon 1 do rbcL de diferentes amostras de Codium. Os valores de “bootstrap” 

estão indicados nos ramos em negrito para “neighbour-joining” (NJ), em itálico para máxima 

parcimônia (MP), ambos para 2000 replicatas e o último número para máxima 

verossimilhança (ML) para 100 replicatas. As flechas ou letras em minúsculas indicam a 

posição dos valores de “bootstrap”, quando não couberam nos ramos. As amostras brasileiras 

cujas seqüências foram feitas nesse trabalho estão em negrito. O número de acesso para as 

amostras obtidas no GenBank está entre parênteses, seguido pela localidade de coleta. 

C

92, 58, - 

100, 87 , 65 

Bryopsis plumosa (AB038480) 

C. decorticatum SC23, 5SC, 16RJ, 24RJ 

C. decorticatum (EF107980) – USA 

C. duthieae (EF107983) – África do Sul B 

a = 62, 64, - 

60, 59, - 

a 

58, 64, - 

C. duthieae (EF107988) - Oman 

C. cylindricum (AB103027) – Japão 

C. galeatum (EF108003) – Austrália 

C. yezoense (AB103024) - Japão 

89, 68, - C. fragile (M67453) - ? 

C. repens 1PE, 22PE 

68, 63, 54 Codium sp (EF108096) - Martinique 

68, 81, 73 

-, 70, 52, 

Codium cf. tenue (EF108091) - Filipinas 

C. repens (EF108069) – Jamaica 


C. intricatum (AB102993) – Japão 

C. taylorii 2SP, 19RJ 

C1 

-, 64, - 

84, 92, 80 

100, 100 , 90 

C. taylorii 7BA, 9BA, 20 BA 

C. taylorii (EF108085) – USA, Atlântico Norte 

C. taylorii (EF108083) - Jamaica 

C. taylorii (EF108077) - Guadalupe 


C2 

-, 58, - 

56, 76, - 

100, 96, 91 

99, 99, 95 

C. isthmocladum 11PB 

C. isthmocladum 15BA 

C. isthmocladum (EF108026) – Porto Rico C 

b = 88, 99, 88 

96, 81, - 

- , 65 - 

-, 65, - 

77, 86, 76 

b C. isthmocladum (EF108027) - Martinique 

99, 99, 97 C. isthmocladum3ES 

C. isthmocladum (EF108025) - Anguilla 

C. platylobium (EF108067) – África do Sul 

C. geppiorum (EF108012) – Sri-Lanka 

C. isthmocladum (EF108036) – USA – Atlântico Norte 

C3 

-, 63, - 

C. ovale (EF108063) - Fujii 

C. contractum (AB102995) – Japão 

Codium cf. latum (EF108050) - Oman 

C. platyclados (EF108065) – Austrália 

C. latum (AB103004) – Japão 

C. gracile (EF108022) – Nova Zelândia 

C. bursa (EF107970) - Croácia 

Codium cf. bursa (EF107973) - Oman 

C. megalophysum (EF108058) – África do Sul 

C. cranwelliae (EF107979) – Nova Zelândia 

c = 55, 64, 56 

c 

96, 85, 55 

C. spongiosum 12RJ, 13ES, 14 RJ 

C. spongiosum (EF108076) – África do Sul 

*17RJ,18BA, 

C. spongiosum (AB102978) - Japão 

21FN,25SC,4ES,6ES 98, 97, 90 C. intertextum 10SP * 

63, 60, 67 

67, 72, 67 

C. intertextum (EF108023) – Jamaica 

C. hubbsii (AB102967) – Japão 

C. lucasii (EF108057) - Oman 

A 

100, 100, 98 

100, 98, 94 

C. lucasii (AB102981) – Japão 

C arabicum (AB102985) - Japão 

5 changes 

C. arabicum (EF107969) - Austrália 

C. convolutum (EF107975) – Tristão da Cunha, 

Atlântico Sul 

Fig. 2 - Árvore consenso de máxima parcimônia (MP) enraizada pelo grupo externo Bryopsis 

plumosa construída para as seqüências do exon 1 do rbcL de diferentes amostras de Codium. 

Os valores de “bootstrap” estão indicados nos ramos em negrito para “neighbour-joining” 

(NJ), em itálico para máxima parcimônia (MP), ambos para 1000 replicatas e o último 

número para máxima verossimilhança (ML) para 100 replicatas. As flechas ou letras em 

minúsculas indicam a posição dos valores de “bootstrap”, quando não couberam nos ramos. 

As amostras brasileiras cujas seqüências foram feitas nesse trabalho estão em negrito. O 

número de acesso para as amostras obtidas no GenBank está entre parênteses, seguido pela 

localidade de coleta.

ANEXOS GERAIS

Anexo 1 – Matriz de distância genética entre as seqüências do exon 1 do rbcL das espécies de Codium coletadas no Brasil, Cdec = C. decorticatum, 

Crep = C. repens, Cspo = C. spongiosum, Ctay = C. taylorii, Cist = C. isthmocladum e Cint = C. intertextum. O nome da espécie é seguido do número 

da amostra e da sigla do estado onde foi coletada. 

Amostras 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 

1 Cdec5SC 0.0000 

2 Cdec16RJ 0.0000 0.0000 

3 Cdec23SC 0.0000 0.0000 0.0000 

4 Cdec24RJ 0.0000 0.0000 0.0000 0.0000 

5 Crep1PE 0.0820 0.0820 0.0820 0.0820 0.0000 

6 Crep22PE 0.0820 0.0820 0.0820 0.0820 0.0000 0.0000 

7 Cspo12RJ 0.0972 0.0972 0.0972 0.0972 0.0930 0.0930 0.0000 

8 Cspo13ES 0.0972 0.0972 0.0972 0.0972 0.0930 0.0930 0.0000 0.0000 

9 Cspo14RJ 0.0972 0.0972 0.0972 0.0972 0.0930 0.0930 0.0000 0.0000 0.0000 

10 Ctay2SP 0.0831 0.0831 0.0831 0.0831 0.0381 0.0381 0.0970 0.0970 0.0970 0.0000 

11 Ctay7BA 0.0816 0.0816 0.0816 0.0816 0.0394 0.0394 0.0954 0.0954 0.0954 0.0025 0.0000 

12 Ctay20BA 0.0816 0.0816 0.0816 0.0816 0.0394 0.0394 0.0954 0.0954 0.0954 0.0025 0.0000 0.0000 

13 Ctay9BA 0.0787 0.0787 0.0787 0.0787 0.0421 0.0421 0.0925 0.0925 0.0925 0.0051 0.0025 0.0025 0.0000 

14 Ctay19RJ 0.0831 0.0831 0.0831 0.0831 0.0381 0.0381 0.0970 0.0970 0.0970 0.0000 0.0025 0.0025 0.0051 0.0000 

15 Cist11PB 0.0981 0.0981 0.0981 0.0981 0.0491 0.0491 0.1124 0.1124 0.1124 0.0588 0.0617 0.0617 0.0646 0.0588 0.0000 

16 Cist3ES 0.0939 0.0939 0.0939 0.0939 0.0506 0.0506 0.1129 0.1129 0.1129 0.0575 0.0575 0.0575 0.0603 0.0575 0.0141 0.0000 

17 Cist15BA 0.0983 0.0983 0.0983 0.0983 0.0491 0.0491 0.1125 0.1125 0.1125 0.0588 0.0616 0.0616 0.0645 0.0588 0.0013 0.0141 0.0000 

18 Cint10SP 0.0973 0.0973 0.0973 0.0973 0.0932 0.0932 0.0195 0.0195 0.0195 0.0959 0.0958 0.0958 0.0928 0.0959 0.1126 0.1131 0.1127 0.0000 

19 Cint4ES 0.0973 0.0973 0.0973 0.0973 0.0932 0.0932 0.0195 0.0195 0.0195 0.0959 0.0958 0.0958 0.0928 0.0959 0.1126 0.1131 0.1127 0.0000 0.0000 

20 Cint6ES 0.0973 0.0973 0.0973 0.0973 0.0932 0.0932 0.0195 0.0195 0.0195 0.0959 0.0958 0.0958 0.0928 0.0959 0.1126 0.1131 0.1127 0.0000 0.0000 0.0000 

21 Cint18BA 0.0973 0.0973 0.0973 0.0973 0.0932 0.0932 0.0195 0.0195 0.0195 0.0959 0.0958 0.0958 0.0928 0.0959 0.1126 0.1131 0.1127 0.0000 0.0000 0.0000 0.0000 

22 Cint17RJ 0.0973 0.0973 0.0973 0.0973 0.0932 0.0932 0.0195 0.0195 0.0195 0.0959 0.0958 0.0958 0.0928 0.0959 0.1126 0.1131 0.1127 0.0000 0.0000 0.0000 0.0000 0.0000 

23 Cint21FN 0.0973 0.0973 0.0973 0.0973 0.0932 0.0932 0.0195 0.0195 0.0195 0.0959 0.0958 0.0958 0.0928 0.0959 0.1126 0.1131 0.1127 0.0000 0.0000 0.0000 0.0000 0.0000 0.0000 

24 Cint25SC 0.0973 0.0973 0.0973 0.0973 0.0932 0.0932 0.0195 0.0195 0.0195 0.0959 0.0958 0.0958 0.0928 0.0959 0.1126 0.1131 0.1127 0.0000 0.0000 0.0000 0.0000 0.0000 0.0000 0.0000

C. decorticatum (CdecSC23) 

C. repens (Crep1PE) 

Codium sp (EF108096) 

Codium cf. tenue (EF108091) 

C. repens (EF108069) 

C. geppiorum (EF108021) 

C. isthmocladum (Cist11PB) 

C. isthmocladum (Cist15BA) 

C. isthmocladum (EF108026) 


C. isthmocladum (Cist03ES) 




C. platylobium (EF108067) 

C. ovale (EF108063) 

C. contractum (AB102995) 

C. intricatum (AB102993) 

Codium cf. latum (EF108050) 

C. platyclados (EF108065) 

C. taylorii (Ctay02SP) 

C. taylorii (Ctay07BA) 

C. taylorii (EF108085) 




C. latum (AB103004) 

C. gracile (EF108022) 

C. bursa (EF107970) 

95 

C. spongiosum (Cspo12RJ) 

C. spongiosum (AB102978) 

C. spongiosum (EF108076) 

60 

97 C. intertextum (Cint10SP) 

C. intertextum (EF108023) 

60 

67 

C. hubbsii (AB102967) 

C. lucasii (EF108057) 

100 

100 

C. lucasii (AB102981) 

C. arabicum (AB102985) 

C. arabicum (EF107969) 

100 

C. convolutum (EF107975) 

84 

Codium cf. bursa (EF107973) 

C. megalophysum (EF108058) 

C. cranweliae (EF107979) 

93 

56 

88 

C. galeatum (EF108003) 

C. yezoense (AB103024) 

59 

C. fragile (M67453Cf) 

C. duthieae (EF107983) 


C. cylindricum (AB103027) 

C. decorticatum (EF107980) 


55 


65 

68 



68 50 Codium cf. tenue (EF108091) 



98 

53 

100 


C. isthmocladum (Cist15BA) 



53 

78 

100 C. isthmocladum (Cist03ES) 


73 










94 

100 

82 









77 

95 




60 



60 

67 



100 

100 




100 


84 



C. cranweliae (EF107979) 

93 

56 

88 



59 







55 

65 

68 

68 50 

98 

53 

100 

53 

78 

100 

73 

94 

100 

82 

77 

Anexo 2: Árvore não-enraizada de “neighbour-joining” (NJ) construída para as 

seqüências do exon 1 do rbcL de diferentes amostras de Codium. Os números dos ramos 

indicam os valores de “Bootstrap” para 2000 replicatas. As amostras brasileiras cujas 

seqüências foram feitas nesse trabalho estão em negrito. O número de acesso para as 

amostras obtidas no GenBank está entre parênteses.


63 



79 

70 






100 

62 

92 






79 

99 


95 C. isthmocladum (Cist15BA) 

81 C. isthmocladum (EF108026) 


65 


69 

85 

92 












63 

86 



64 

61 

98 


C. intertextum (Cint10SP) 


76 



88 

100 

99 




59 

68 




C. cranwelliae (EF107979) 

69 C. galeatum (EF108003) 

70 C. yezoense (AB103024) 


C. duthiaeae (EF107983) 




5 changes 

Anexo 3: Árvore não-enraizada de máxima parcimônia (MP) construída para as 







62 Codium sp (EF108096) 

82 

53 

69 






68 



81 C. taylorii (EF108083) 





51 

52 




81 












69 

58 C. spongiosum (Cspo12RJ) 


88 



59 C. intertextum (EF108023) 

92 C. arabicum (AB102985) 


100 









74 








Anexo 4: Árvore não-enraizada de máxima verossimilhança (ML) construída para as 





59 

63 


96 

60 

58 


92 C. decorticatum (CdecSC23) 

51 C. decorticatum (EF107980) 

100 C. cylindricum (AB103027) 


62 C. duthieae (EF107988) 

89 



C. fragile (M67453) 


67 

68 



68 50 




52 C. isthmocladum (Cist11PB) 


99 

88 



56 77 




52 





69 


Codium cf latum (EF108050) 












96 C. spongiosum (AB102978) 


63 


C. interetextum (EF108023) 


67 


100 

100 







Anexo 5: Árvore enraizada de “neighbour-joining” (NJ) construída para as seqüências 

do exon 1 do rbcL de diferentes amostras de Codium. Os números dos ramos indicam 

os valores de “Bootstrap” para 1000 replicatas. As amostras brasileiras cujas seqüências 

foram feitas nesse trabalho estão em negrito. O número de acesso para as amostras 

obtidas no GenBank está entre parênteses.

5 changes 

58 

58 



87 



59 

64 C. duthieae (EF107988) 


64 

68 




63 

81 

70 








64 C. taylorii (Ctay07BA) 

92 

100 






76 

99 




65 


65 


86 



81 




63 









64 

85 





60 C. intertextum (EF108023) 


72 



100 98 C arabicum (AB102985) 



Anexo 6: Árvore enraizada de máxima parcimônia (MP) construída para as seqüências 

do exon 1 do rbcL de diferentes amostras de Codium. Os números dos ramos indicam 

os valores de “Bootstrap” para 1000 replicatas. As amostras brasileiras cujas seqüências 

foram feitas nesse trabalho estão em negrito. O número de acesso para as amostras 

obtidas no GenBank está entre parênteses.


65 








54 

73 




52 




55 C. spongiosum (EF108076) 

90 C. spongiosum (AB102978) 



67 

94 C. arabicum (AB102985) 


98 C. hubbsii (AB102967) 




80 









95 

88 88 



76 










C. platycladus (EF108065) 









Anexo 7: Árvore enraizada de máxima verossimilhança (ML) construída para as 






5. CONSIDERAÇÕES FINAIS 

Para a taxonomia do gênero Codium, a combinação dos caracteres 

morfo-anatômicos como o hábito, o tipo de ramificação, assim como o tamanho 

e forma dos utrículos são importantes atributos que permitem uma relativa 

facilidade na distinção específica (Pedroche et al. 2002). Ainda de acordo com 

os referidos autores, os caracteres utriculares e reprodutivos são as melhores 

ferramentas, principalmente para aquelas espécies com intricada variação 

morfológica. A importância taxonômica dos utrículos vem sendo ressaltada 

desde o século passado. 

Neste trabalho, com base nos caracteres morfo-anatômicos, sete táxons 

infragenéricos foram identificados C. decorticatum, C. intertextum, C. 

isthmocladum, C. repens, C. spongiosum, C. taylorii e Codium sp. A partir 

deste estudo, C. tomentosum está sendo citada como uma espécie de 

ocorrência duvidosa para a costa brasileira, por não ter sido encontrada nos 

herbários brasileiros e nem ter sido coletada. Além disso, conforme Silva 

(1960,1962) a referida espécie foi erroneamente designada para os Codium 

dicotômicos do Atlântico Ocidental. C. profundum está sendo citado neste 

trabalho como Codium sp, por não ter sido apresentada uma diagnose em 

latim na sua descrição original como recomenda o Código Internacional de 

Nomenclatura Botânica. Dentre os caracteres analisados, o hábito, o padrão de 

ramificação e a forma e dimensão dos utrículos foram os mais importantes na 

identificação específica, corroborando com Silva (1955,1960) e Pedroche et al. 

(2002). 

Foram reconhecidos para a costa brasileira dois morfotípos 

subgenéricos. O primeiro, representado por talo prostrado e sem ramificação 

caracterizando o subgênero Tylecodium e o segundo, caracterizado por talo 

ereto a procumbente, com ramificação diversa, caracterizando os 

representantes do subgênero Shizocodium, este último com maior número de 

representantes (C. decorticatum, C. isthmocladum, C. taylorii, C. repens e 

Codium sp).


Na flora brasileira, C. isthmocladum, C. taylorii e C. decorticatum foram 

as espécies que apresentaram maior plasticidade morfológica. Em alguns 

casos os espécimes apresentavam combinações de caracteres entre si, 

levando a supor a ocorrência de hibridização na população. Estes fatos 

corroboram com Silva (1960) para Codium do Atlântico Tropical e Alves & 

Moura (2005) para Codium da Ilha de Itaparica –BA. 

Pode-se afirmar que o maior conhecimento sobre a diversidade específica 

do gênero Codium está na região entre-marés, considerando a área coberta 

através da coleta de material e da consulta de 909 exsicatas depositadas, em 

sua maioria, nos herbários nacionais indexados. Comentário semelhante não 

pode ser feito com relação aos representantes do infralitoral da costa brasileira. 

Este fato é devido as coletas, tradicionalmente, estarem direcionadas a região 

entre-marés, pelas facilidades de deslocamento e custo. Mesmo assim um 

grande número de exsicatas, cujos espécimes foram coletados através de 

dragagens pelas Expedições Oceanográficas como Akaroa, Canopus, 

Almirante Saldanha e Comissão Recife foram analisados. Infelizmente não foi 

possível analisar o material coletado na região Nordeste e Sudeste pelo 

Programa Revizee (Recursos Vivos da Zona Econômica Exclusiva). 

Atualmente, o método de dragagem não vem sendo recomendado para fundos 

consolidados (fundos rochosos) o que é preocupante, pois estes fundos 

abrigam as comunidades mais ricas em algas bênticas (Horta 2000). Nesta 

pesquisa, o gênero Codium mostrou-se quase que exclusivamente epilítico, 

sendo a maioria dos exemplares coletados sobre substrato consolidado, como 

os recifes de arenito e costões rochosos. 

A taxonomia do gênero Codium baseada apenas nos caracteres 

morfológicos tem sido muito complexa, devido ao grande número de espécies 

descritas, aliado a elevada plasticidade fenotípica e ampla distribuição 

geográfica (Verbruggen et al. 2007). Na dificuldade de precisar as variações 

fenotípicas apresentadas pelo gênero, foi necessário utilizar outras ferramentas 

sendo, atualmente, o uso de marcadores moleculares a mais apropriada neste 

sentido. A maioria dos trabalhos envolvendo o referido gênero, tem sido feita 

com base nas seqüências moleculares para o exon 1 do gene rbcL.


No presente estudo, seqüências moleculares deste gene foram utilizadas 

para auxiliar a taxonomia dos representantes do gênero Codium que ocorrem 

na flora brasileira. Vários autores enfatizam a dificuldade de delimitar algumas 

espécies com base apenas nos caracteres morfo-anatômicos (Chacana et al. 

1996, Silva 1998, Pedroche 2001, Pedroche et al. 2002). Para as espécies 

brasileiras, de uma maneira geral, a análise destes caracateres foram 

importantes na delimitação específica. Apenas para os exemplares de C. 

repens coletados na costa da região Nordeste, identificados primeiramente 

como Codium edule P. C. Silva, foi necessário à análise da biologia molecular 

para uma correta identificação. As demais identificações foram corroboradas 

com a ferramenta da biologia molecular. 

É importante salientar que a partir desta pesquisa, ficou evidente que a 

ampla plasticidade fenotípica encontrada em algumas espécies do litoral 

brasileiro, são decorrentes das variações ambientais. Portanto o marcador 

molecular rbcL mostrou-se bastante eficiente, uma vez que as espécies 

brasileiras seqüenciadas se agruparam com outras amostras de mesma 

designação em clados monofiléticos. 

Dentre as espécies ocorrentes no Brasil, duas fazem parte de “complexos 

morfológicos”, sendo que C. intertextum pertence ao “complexo arabicum” e C. 

repens ao “complexo geppiorum”. Ambos complexos são formados por 

espécies distintas, com morfologias muito próximas, geralmente confinadas 

predominantemente à Região Indo-Pacífica. Os representantes que compõem 

ambos complexos apresentam a taxonomia ainda mal delineada e 

freqüentemente são confudidas por apresentar morfologia próxima e tamanho 

contínuo dos utrículos (Chang et al. 2002). Entre as duas espécies brasileiras 

que estão inseridas nos complexos morfológicos, C. repens foi a que 

apresentou maior dificuldade de identificação taxonômica, devido à variação 

encontrada como o padrão de ramificação e espessura dos ramos, tendo a sua 

identificação taxonômica auxiliada com o estudo da biologia molecular. 

Portanto, o gene rbcL tem-se mostrado adequado para identificação e 

delineação de espécies e pode ser utilizado para avaliar a utilidade dos 

caracteres morfológicos, hipóteses biogeográficas, ocorrência de espécies


crípticas, além de identificação de espécies invasoras (Shimada et al. 2004; 

Verbruggen et al. 2007).

Taxonomia, distribuição geográfica e filogenia do gênero Codium

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